mRNA的简介、研究方法和应用
mRNA的简介、研究方法和应用
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2026-10-13
mRNA,全称信使RNA(messenger RNA),是遗传信息从DNA传递到蛋白质机器的核心信使。1958年Jacob和Monod提出“信使”假说,1961年Brenner等人通过实验首次在细菌中证实了mRNA的存在,这一发现奠定了现代分子生物学的理论基础。mRNA分子通常由前体mRNA(pre-mRNA)经剪接、加帽、加尾等加工后,从细胞核输出到细胞质,指导蛋白质翻译。
在基因表达调控、转录后加工、RNA代谢及疾病机制研究中,mRNA的分析已成为核心手段。然而,mRNA在总RNA中占比仅1%-5%,且存在polyA尾动态变化、二级结构复杂等特性,给其研究带来了独特的技术挑战。系统掌握mRNA的研究方法、技术路线和适用场景,对于开展高质量的转录组学研究至关重要。
mRNA的核心功能特征之一是3'末端的polyA尾结构。polyA尾并非基因组编码,而是在转录后由polyA聚合酶(PAP)添加,其长度在多物种中高度动态。例如,在人类细胞中polyA尾结构平均约250 nt,而在酵母中仅约20-30 nt。polyA尾对mRNA的稳定性、运输和翻译效率均有调控作用,可通过检测polyA尾长度来评估mRNA的翻译活性状态。
然而,mRNA的研究面临多重挑战。首先,总RNA中核糖体RNA(rRNA)占比高达80%-95%。有效测序数据将被严重稀释。其次,mRNA分子容易降解,尤其从FFPE组织或血清样本中提取时,完整性难以保证。第三,mRNA存在复杂的二级结构,逆转录时容易提前终止或产生非特异性产物。这些挑战要求我们需要根据样本类型和实验目的,选择合适的技术路线。
传统的基因表达分析方法(如Northern blot、qPCR)虽然可以对特定mRNA进行定量,但通量低、无法发现未知转录本,也难以全面反映转录组的复杂性和动态变化。微阵列芯片虽能高通量检测已知基因,但受限于探针设计,无法识别新的剪接异构体或非编码RNA。面对转录后调控、可变剪接、RNA编辑等精细调控机制,传统方法往往力不从心。新一代测序(NGS)技术的出现,使得对mRNA进行无偏倚、高通量的全景分析成为可能,而mRNA富集与建库方法的选择则直接决定了测序数据的质量和解读深度。
目前mRNA研究的技术路线主要分为两大类:基于polyA尾的mRNA富集法和基于rRNA去除的全转录组法。两者各有优势,适用于不同的样本类型和研究目的。
mRNA富集法以polyA尾为靶点,利用oligo(dT)探针进行亲和捕获。经典方法为oligo(dT)磁珠亲和富集法:将oligo(dT)探针固定于磁珠表面,与总RNA孵育后,polyA尾与oligo(dT)碱基互补配对,从而将mRNA从rRNA和tRNA中分离出来。该方法操作简便、成熟可靠,提取产物中mRNA纯度较高,是mRNA-seq文库构建的常规前处理步骤。翌圣生物的Hieff NGS® mRNA Isolation Master Kit V2(货号12629ES)基于此原理设计,适用于从真核生物总RNA中抓取完整mRNA。
mRNA富集法的优势在于:对高质量完整RNA样本可获得极高的mRNA纯度和测序数据有效性,成本相对较低。其局限性主要体现在:需要完整的polyA尾结构,不适用于降解样本(如FFPE组织、血清、尿液等)。
图1利用Oligo(dT)磁珠特异性吸附真核生物mRNA示意图(图片来源:网,侵删)
当研究对象的RNA质量较差(如FFPE组织、降解血清样本),或需要保留非编码RNA信息时,全转录组建库是更优选择。这要求先通过rRNA depletion去除高丰度的核糖体RNA,再进行逆转录和建库。翌圣Hieff NGS® MaxUp Human rRNA Depletion Kit (rRNA & ITS/ETS)(货号12257ES)可覆盖人、小鼠、大鼠来源样本的rRNA去除,并兼容部分降解的临床样本。
rRNA去除法的优势在于:不依赖polyA尾结构,适用于降解样本和低质量RNA;可以同时捕获mRNA和多种非编码RNA(如lncRNA、circRNA、miRNA前体等),适合全转录组研究。其挑战在于:操作步骤相对复杂,对RNA起始量要求较高;探针设计需要针对特定物种,跨物种样本可能存在捕获偏差。
无论选择mRNA富集还是rRNA去除,下游都需要将RNA逆转录为cDNA,以便进行NGS文库构建。逆转录酶的热稳定性决定了能否在较高温度下反应,从而克服RNA二级结构对逆转录的阻碍。因此需要采用高热稳定性逆转录酶,保证cDNA产物完整性好、长度分布宽,能够支持从qPCR到NGS的多种下游应用。
mRNA富集法和rRNA去除法的选择取决于样本质量、研究目的和预算条件。
样本质量:当样本为高质量、完整性好的RNA(如新鲜冻存细胞或组织)时,mRNA富集法经济高效;当样本为部分降解的RNA(如FFPE组织、血清、外泌体)时,rRNA去除法是更可靠的选择。
研究目的:如果研究仅关注mRNA的表达水平和可变剪接,mRNA富集法即可满足需求;如果需要同时分析非编码RNA(如lncRNA、circRNA),或者对转录组进行无偏倚全景扫描,则应选择rRNA去除法。
成本与通量:mRNA富集法操作更简单、成本更低,适合大批量样本的常规转录组测序;rRNA去除法步骤略多、成本稍高,但信息量更丰富,适合探索性研究或临床降解样本。
在实际应用中,两种技术可以互为补充。例如,在肿瘤标志物发现研究中,对新鲜冻存的肿瘤组织可采用mRNA富集法进行常规表达谱分析,而对存档的FFPE样本则需采用rRNA去除法以保证数据产出。
mRNA研究是解析基因表达调控和转录组复杂性的核心手段。从基于oligo(dT)磁珠的高效mRNA富集,到适用于降解样本和全转录组研究的rRNA去除法,再到高温稳定性逆转录酶的优化应用,每一项技术路线都有其独特的优势和适用场景。应根据样本质量、研究目标和资源条件,合理选择技术路线,并严格执行从RNA提取到测序文库构建的全流程质量控制。
随着单细胞转录组、空间转录组和长读长测序技术的快速发展,mRNA研究正从群体平均表达走向单细胞分辨率和全长转录本水平。未来标准化流程的建立、AI辅助的数据分析以及便携化测序设备的普及,将进一步推动mRNA研究在基础科研、临床诊断和药物开发中发挥更大的作用。
翌圣RNA建库试剂选择指南
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RNA建库系列 |
货号 |
主要应用 |
产品特点 |
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mRNA抓取 |
真核生物mRNA抓取 |
1、特异性富集mRNA; 2、兼容动物、植物、真菌等真核生物,针对中草药、多糖多酚、肿瘤等含抑制物的样本,mRNA纯化高,rRNA残留率低 |
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核糖体去除 |
植物rRNA去除 |
1、RNaseH酶法rRNA去除试剂盒; 2、适配不同的植物样本,rRNA残留率低; |
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人/小鼠/大鼠rRNA去除 |
1、RNaseH酶法rRNA去除试剂盒; 2、适配人/小鼠/大鼠等哺乳动物rRNA去除; 3、其他不含翅膀的动物样本可选用 |
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Globin去除探针 |
1、Globin去除探针,血液样本中去除珠蛋白; 2、需搭配12257使用; |
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原核生物rRNA去除 |
1、磁珠法rRNA去除; 2、去除原核微生物、古生菌的rRNA; |
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3 min快速去除(人) |
1、 3min快速去除,在逆转录阶段去除rRNA; 2、适合物种:人; 3、低背景菌版本,病原背景菌低; |
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非预混建库试剂盒 |
常规mRNA建库试剂盒 |
1、试剂盒含mRNA抓取; 2、非预混版RNA建库试剂盒, |
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常规lncRNA建库试剂盒 |
1、非预混版total RNA建库试剂盒; 2、搭配4x Frag/buffer,RIP实验兼容更大投入体积量RNA; 3、可搭配mRNA抓取或者rRNA去除试剂盒使用; |
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预混/板式建库试剂盒 |
常规TotalRNA建库试剂盒,lncRNA建库 |
1、预混建库试剂盒,试剂组分少,人工操作步骤少; 2、板式建库试剂盒,搭配自动化,撕膜即用; 3、链特异建库,链特异率高; 4、搭配mRNA抓取或者rRNA去除使用 |
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常规TotalRNA建库试剂盒,mRNA建库 |
1、预混建库试剂盒,试剂组分少,人工操作步骤少; 2、板式建库试剂盒,搭配自动化,撕膜即用; 3、非链特异建库,搭配mRNA抓取试剂盒使用; |





