产品简介

 

GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF是一种GST标签蛋白纯化树脂，可以一步纯化各种表达系统中谷胱甘肽-S-转移酶、谷胱甘肽依赖性蛋白和谷胱甘肽重组衍生物。在结构上，该树脂是以高度交联的4%琼脂糖凝胶为基质，通过12个原子的间隔臂，用化学方法共价结合还原型谷胱甘肽制作而成，具有更高的物理化学特性，可以耐受更高的压力，在相对较高的流速下，实现对目的蛋白的纯化，更适于工业大规模蛋白的纯化。

GSTSep Glutathione 4FF Chromatography Column, 1 mL是装填了GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF的一种中压预装柱，规格1 mL，预装柱具有标准接口，可以适配商品化的各类中压色谱系统，如ÄKTA 等，方便客户操作。

 

产品信息

 

货号	20509ES03/20509ES08
规格	1 mL /5×1 mL

 

产品性质

 

基质（Matrix）	高度交联的4%琼脂糖微球
配体（Ligand）	通过12原子间隔臂偶联的谷胱甘肽
粒径（Bead size）	45-165 µm
载量（Capacity）	>10 mg GST蛋白（40 kDa）/mL基质
最大压力（PressureMax）	0.3 MPa，3 bar
pH稳定范围（pH range）	3-12
储存缓冲液（Buffer）	含20%乙醇的1×PBS

 

储存条件

 

2~8℃保存，有效期2年。

 

需准备试剂

 

所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤除菌。

平衡/洗杂缓冲液：140 mM NaCl，2.7 mM KCl，10 mM Na₂HPO₄，1.8 mM KH₂PO₄，pH 7.4

洗脱缓冲液：用平衡液配制10 mM 还原型谷胱甘肽（现配现用）

【注】平衡/洗杂缓冲液或洗脱缓冲液中可加入1-10 mM DTT。

 

使用说明

 

【注】样品在上样前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤，减少杂质以防阻塞柱子。

1. 样品纯化（以Akta为例）

1）准备：将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子，将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口，将预装柱接到色谱系统中，并旋紧。

2）清洗：3-5倍柱体积去离子水冲洗层析柱中储存液。

3）平衡：用5倍柱体积的平衡Buffer平衡层析柱，使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下，起到保护蛋白的作用。

4）上样：将样品加到平衡好的层析柱中，推荐流速1 mL/min，保证目的蛋白与树脂充分接触，提高目的蛋白的回收率，收集流出液，待检测。
   注意：样品的粘度增加使得即使上样体积很少，也会导致层析柱很大的反压。上样量不要超过柱子的结合能力。大量的样品体积也可能造成很大的反压，使得进样器更难使用。

5）洗杂：用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗，直到紫外吸收达到一个稳定的基线，去除非特异性吸附的杂蛋白，收集洗杂液，待检测。

6）洗脱：用洗脱Buffer 采用一步法或线性梯度洗脱。一步洗脱中，通常5倍柱体积洗脱液足够将目的蛋白洗脱下来。也可以用一个小的梯度，例如20倍柱体积或更多，来分离不同结合强度的蛋白质。

7）清洗与保存：依次使用3倍柱体积的平衡Buffer和5倍柱体积的去离子水平衡填料，最后用5倍柱体积的20%的乙醇平衡，然后保存在等体积的20%乙醇中，置于4℃保存，防止填料被细菌污染。

2. SDS-PAGE检测

将纯化过程中得到的样品（包括原始样品、流出组分、洗杂及洗脱组分等）利用SDS-PAGE进行检测，判定其纯化效果。

3.   填料清洗

GST标签蛋白纯化产品可以重复使用而无需再生，但随着非特异结合蛋白的增多和蛋白的聚集，会造成流速和结合载量性能下降，此时需对填料进行清洗。

1）去除一些沉淀或变形物质

用2倍柱体积的6 M盐酸胍溶液进行清洗，然后立即用5倍柱体积的PBS，pH 7.4清洗。

2）去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质

用3-4倍柱体积的70%乙醇或2倍柱体积1% Triton X-100清洗，然后立即用5倍柱体积的PBS，pH 7.4清洗。

 

注意事项

 

1.请勿冷冻保存本产品。

2.所有操作过程中，样本需要在4℃或冰上操作。

3.本产品仅作科研用途。

4. 为了您的安全和健康，请穿实验服并佩戴一次性手套操作。

 

附表 问题及解决方案

 

问题	可能原因	推荐解决方案
柱子反压过高	填料被堵塞	清洗树脂
		裂解液中含有微小的固体颗粒，建议上样前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤，或离心去除
	样品太黏稠	样品中含高浓度的核酸，延长破碎时间直至粘度降低，或添加DNaseI （终浓度为5 µg/mL），Mg2+（终浓度1 mM），冰上孵育10-15 min
	缓冲液太黏稠	有机试剂或蛋白稳定试剂（如甘油等）可能会引起反压增高，降低操作流速
洗脱组分中无目的蛋白	GST标签蛋白变性了	使用温和的裂解条件，实验条件以经验为准
	过度的裂解使目的蛋白变性
	目的蛋白聚集产生沉淀	在细胞裂解前溶液中加入DTT，终浓度为1-10 mM
	融合蛋白改变了GST的构象，影响了目的蛋白的结合力	测定pGEX中GST的结合力，对载体进行超声处理，检测其结合力。如果载体中GST有很高的亲和力，有可能是改变融合蛋白的构象从而降低了GST标签蛋白的亲和力
		降低结合温度至4℃，充分清洗
	柱子平衡时间太短，目的蛋白不是在pH 6.5-pH 8.0范围内结合	用pH 6.5-pH 8.0的buffer进行充分的平衡，如PBS
目的蛋白没有完全洗脱下来	洗脱体积太少	增加洗脱液体积，减小洗脱流速。
	洗脱液中谷胱甘肽浓度太低	增加洗脱液中还原型谷胱甘肽浓度，可尝试用20-40 mM还原型谷胱甘肽洗脱。
	低pH影响洗脱	在不增加洗脱液中谷胱甘肽量时，提高洗脱液中pH至pH 8-9会有改善
		增加洗脱液中离子强度，如0.1-0.2 M NaCl
	洗脱液中谷胱甘肽被氧化	使用新鲜配制的洗脱液
		加入DTT
	非特异性疏水作用影响目的蛋白的溶解和洗脱	洗脱液中加入非离子型洗涤剂，如0.1%的Triton X-100或者2%正辛基-β-D-吡喃葡糖苷Tween-20
电泳或Western Blot检测中发现多条带	Mr 70000蛋白与目的蛋白一起纯化下来	Mr 70000蛋白可能是大肠杆菌基因DnaK的产物，可以在目的蛋白中加入50 mM Tris-HCl，2 mM ATP，10 mM MgSO4，pH 7.4在37℃加热10min去除
		可通过ATP-琼脂糖胶或离子交换来去除目的蛋白溶液中的dnaK蛋白
	GST融合蛋白已经发生降解	在裂解液中加入蛋白酶抑制剂，如加入1 mM PMSF
		可能是蛋白酶对目的蛋白部分降解造成的，可使用蛋白酶缺陷型宿主菌（如lon-或ompT）
	细胞破碎过度	减少细胞破碎时间，超声前加入溶菌酶（菌液体积的0.1倍10 mg/mL溶菌酶，25 mM Tris-HCl，pH 8.0），避免发泡导致蛋白酶变性，过度超声破碎增加宿主内源蛋白与GST融合目的蛋白的共纯化。
	共价共纯化	包括促进蛋白正确折叠的分子伴侣的共纯化，如：DnaK（Mr～70000），DnaJ（Mr～37000），GrpE（Mr～40000），GroEL（Mr～57000），GroES（Mr～10000）
	抗体与E. coli的各种蛋 白反应	抗体吸附E. coli蛋白：GST-抗体；超声处理去除GST抗体，可以用Western Blot检测

Ver.CN20230921