上新 | Endonuclease III (Nth),破解氧化嘧啶损伤检测难题,彗星实验结果更稳
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2026-09-07
氧化应激诱导产生的 DNA 碱基损伤,广泛见于衰老、肿瘤、神经退行性疾病、环境毒理以及药物遗传毒性评价研究。氧化嘧啶损伤(胸腺嘧啶乙二醇、5,6-二羟基胸腺嘧啶等)是细胞内高频发生的 DNA 损伤类型,也是 BER 碱基切除修复通路的关键研究底物。
碱性彗星实验是 DNA 损伤检测的主流手段,但在针对氧化嘧啶损伤开展研究时,仍存在诸多已被文献报道的方法学固有局限:
常规碱性彗星仅检出总 DNA 损伤,无法区分氧化嘧啶、氧化嘌呤与物理 DNA 断裂,氧化嘧啶损伤易被掩盖,不能解析损伤亚型。[1]
氧化嘧啶损伤本身不会产生 DNA 切口,必须依靠特异性 DNA 糖基化酶完成损伤-信号转化,若无该类工具酶则无法实现体外定量检测。[2]
针对上述研究难点,翌圣生物特推出 Endonuclease III (Nth)(Cat#14275ES),作为特异性识别氧化嘧啶的双功能 DNA 糖基化酶,是氧化嘧啶损伤体外研究的核心工具酶。该酶兼具以下两种活性:
N-糖基化酶活性:识别并切除双链 DNA 中受损的嘧啶碱基,产生脱嘧啶(AP)位点;
AP-裂解酶活性:在 AP 位点的 3′ 端进行切割,生成带有 5′ 磷酸基团和 3′ 开环糖的切口。[3]
Endonuclease III (Nth) 可特异性识别并切除多种氧化性嘧啶损伤产物,包括但不限于:尿素、5,6-二羟基胸腺嘧啶、胸腺嘧啶乙二醇、5-羟基-5-甲基乙内酰脲、尿嘧啶乙二醇、6-羟基-5,6-二羟基胸腺嘧啶及甲基羟丙二酰脲。

图1. Endonuclease III (Nth) 工作原理示意图
核心应用场景
基于上述特性,Endonuclease III (Nth) 可广泛应用于以下应用场景:
酶修饰单细胞凝胶电泳(彗星实验)
行业主流的氧化嘧啶损伤特异性检测方案。凝胶裂解后的细胞样本经过 Endonuclease III (Nth) 孵育,特异性将氧化嘧啶损伤转化 DNA 切口,碱性电泳实现单细胞水平氧化嘧啶损伤定量。可用于人群氧化应激监测、药物遗传毒性评价、抗氧化活性物质筛选、纳米 / 环境污染物毒理评估;常与 Fpg 配对使用,分别解析嘧啶、嘌呤类氧化碱基损伤。[1]
碱洗脱实验
利用 Endonuclease III (Nth) 在氧化嘧啶位点制造 DNA 切口,通过 DNA 滤膜洗脱速率实现基因组损伤定量,多用于化合物体外 DNA 损伤筛选、毒理机制探究。[4]
碱解旋实验
依靠 Endonuclease III (Nth) 引入 DNA 切口,根据碱性环境下 DNA 双链解旋程度评估损伤水平,适合大样本高通量初筛。[4]
BER 通路体外重构与细胞修复能力评估
作为碱基切除修复通路起始关键酶,可在体外重构 BER 修复反应;结合彗星法测定细胞、组织提取物对氧化损伤 DNA 的修复切口活性,评估内源碱基切除修复能力,支撑衰老、神经退行性疾病相关机制研究。[5]
翌圣 Endonuclease III (Nth)
(Cat#14275ES)数据展示
高效切割受损碱基,媲美进口品牌

图2. 翌圣 Endonuclease III (Nth) 切割活性验证
注:在20 μL 反应体系中加入20 pmol 含单个 AP 位点的DNA底物,于37℃反应30 min 后,经蛋白酶 K 于50℃处理5 min,使用15% TBE-尿素变性聚丙烯酰胺凝胶(TBE-Urea PAGE)检测。
核酸外切酶和非特异性核酸酶残留低

图3. 翌圣 Endonuclease III (Nth) 核酸外切酶和非特异性核酸酶残留检测结果
注:经琼脂糖凝胶电泳检测,三批次 Endonuclease III (Nth) 与核酸底物共同孵育后,电泳条带清晰、单一,未见降解或拖尾现象。
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*参考文献
Collins A R, Møller P, Gajski G, et al. Measuring DNA modifications with the comet assay: a compendium of protocols[J]. Nat Protoc, 2023, 18(2): 929-989.
Collins A R, Duthie S J, Dobson V L. Direct enzymatic detection of endogenous oxidative base damage in human lymphocyte DNA[J]. Carcinogenesis, 1993, 14(9): 1733-1735.
Thayer M M, Ahern H, et al. Structure of a trapped endonuclease III-DNA covalent intermediate[J]. EMBO J, 2002, 21(17): 4678-4687.
Cadet J, Davies K J A, Medeiros M H G, et al. Formation and repair of oxidatively generated damage in cellular DNA[J]. Free Radic Biol Med, 2017, 107: 13-34.
Langie S A S, et al. Measuring DNA repair incision activity of mouse tissue extracts towards singlet oxygen-induced DNA damage: a comet-based in vitro repair assay[J]. Mutagenesis, 2011, 26(3): 461-471.





