一、基础知识

Q1：Cas9蛋白（RNP）与Cas9质粒（pDNA）、Cas9 mRNA有什么区别？

A1：

生物形式	优点	局限性
pDNA形式	l 易于构建 l 操作简单 l 成本低	l 尺寸过大增加CRISPR系统递送和表达的难度 l pDNA转录、翻译过程会降低编辑效率 l Cas蛋白长时间存在于细胞中，会导致更高的脱靶效应 l 有随机整合的风险，对细胞基因组的影响不可预测
mRNA形式 （Cas mRNA+gRNA递送）	l mRNA在细胞中的转换速度快，可降低脱靶率 l 能对剂量进行精确控制，限制蛋白质的持久性，有助于降低CRISPR系统的脱靶效应	l mRNA的稳定性相对较差 l 在载体的设计方面必须保护mRNA免受胞外核酸酶的降解
RNP形式 （Cas蛋白+gRNA递送）	l 编辑效率高，极大程度降低脱靶效应 l 可以解决某些蛋白质表达困难	l Cas蛋白注入血液后易被蛋白酶降解 l RNP分子较大，穿透细胞膜过程会受限

 

Q2：Cas9 核酸酶，10mg/mL换算成摩尔浓度是多少？

A2：

 

Q3：使用Cas9 RNP有什么独特优势？

A3：除了Q1中提到的时间窗口可控、脱靶率低、无整合风险外，Cas9 RNP在实际应用中还有以下独特优势：
(1) 共递送便捷：RNP可以与供体DNA（ssDNA/dsDNA）同时电转，确保"编辑器"和"修复模板"进入同一个细胞——这对HDR敲入实验至关重要。
(2) 剂量精准可控：RNP是预先组装好再递送的，可以精确控制进入细胞的Cas9摩尔数，这对于需要剂量优化的实验（如原代细胞编辑）非常有价值。
(3) 编辑窗口窄、嵌合率低：在胚胎显微注射中，RNP在受精卵内仅活跃数小时，编辑几乎都发生在单细胞阶段，F0个体的嵌合率远低于mRNA注射方案。
(4) 多靶点并行：将靶向不同基因的sgRNA等量混合后与Cas9蛋白孵育，可一次性递送多靶RNP，实现多重基因编辑。
(5) 细胞治疗合规性：临床级细胞治疗产品（如CAR-T）对"无外源DNA"有严格要求，RNP是目前唯一满足这一要求的Cas9递送形式。

Q4：Cas9蛋白是怎么实现基因编辑的？PAM序列是什么？

A4：Cas9蛋白是来源于化脓性链球菌（Streptococcus pyogenes）的RNA引导的DNA内切酶。工作流程：
(1) sgRNA识别：sgRNA的5'端20个核苷酸（spacer序列）通过碱基互补配对识别基因组DNA上的靶序列。
(2) PAM验证：Cas9蛋白检查靶序列下游是否紧邻一个"NGG"三核苷酸序列——这就是PAM。只有存在正确的PAM（5'-NGG-3'），Cas9才会启动DNA切割。NGG中的N可以是A、T、C或G任意碱基。
(3) DNA双链断裂（DSB）：PAM验证通过后，Cas9的两个核酸酶结构域（RuvC和HNH）各切割一条DNA链，在PAM上游3-4个碱基处产生平末端DSB。
(4) 细胞修复：DSB触发细胞的DNA损伤修复机制——主要是非同源末端连接（NHEJ）和同源定向修复（HDR）。NHEJ容易产生随机插入/缺失（Indel），导致基因敲除；HDR可在外源供体模板指导下实现精准敲入。

二、产品使用

Q5：Cas9蛋白和sgRNA的最佳摩尔比是多少？如何计算？

A5：推荐摩尔比：Cas9 : sgRNA = 1 : 1 ~ 1 : 3。

  

Q6：RNP组装后能保存多久？孵育条件有什么要求？

A6：组装条件：Cas9蛋白与sgRNA混合后，推荐室温（20-25°C）或37°C孵育10-20分钟。孵育时间过短（<5分钟）可能导致RNP组装不完全；孵育时间过长（>1小时）不会明显提高编辑效率，反而可能增加蛋白降解风险。

短期保存：组装后的RNP在冰上可稳定保存2-4小时。如果当天内使用，组装完成后置于冰上即可。

长期保存（-80°C）：如需保存，可分装后-80°C冻存，但不超过1周，且避免反复冻融。使用前冰上解冻。

三、sgRNA设计与选择

Q7：如何设计一条高效的sgRNA？

A7：高效sgRNA设计的关键原则：
(1) 靶向位置：对于基因敲除（KO），优先靶向基因编码区的早期外显子（通常为第2-4外显子），且位于起始密码子ATG下游。这样即使发生3的倍数的Indel（in-frame deletion），提前终止密码子（PTC）也会触发无义介导衰变（NMD）降解不完全蛋白。
(2) On-target score（靶向效率评分）：选择评分≥60的sgRNA。评分越高，sgRNA在目标位点的切割效率预测越高。
(3) Off-target score（脱靶风险评分）：优先选择高特异性（≥80分）的sgRNA。避免选择与基因组其他位置有≥3个连续错配容忍度的序列。
(4) 每个基因设计3-4条候选sgRNA：预实验筛选切割效率最高（TIDE≥70%）的一条用于后续实验。至少保存一条备用sgRNA。
设计建议：优先使用CHOPCHOP和CRISPick独立设计，交叉验证两个工具推荐的sgRNA是否重叠。重叠区域通常是高质量靶位点。

Q8：一条sgRNA不够高效怎么办？可以混合多条sgRNA吗？

A8：完全可以。混合使用2-3条靶向同一基因不同位点的sgRNA是提高KO效率的常用策略。

n 多条sgRNA混合的优势：(1) 增加基因组目标区域的覆盖率——不同sgRNA切割不同位点，任何一个位点产生移码突变即可实现KO；(2) 可以实现大片段删除——两条sgRNA靶向同一染色体的上下游区域，可切除中间的基因组片段（>100 bp至数kb）；(3) 补偿sgRNA效率差异——即使某条sgRNA效率不佳，其他sgRNA可以"兜底"。

n 操作要点：将多条sgRNA等摩尔混合（如3条sgRNA各1/3量），总摩尔数保持与单sgRNA方案一致。Cas9蛋白总量不变——Cas9会在不同RNP复合物之间动态分配。

注意事项：(1) 混合sgRNA总数不宜超过5条——超过后每条sgRNA的用量太低，可能全都不够高效；(2) 如果多条sgRNA的靶位点在基因组上距离较远（>10 kb），大片段删除的效率可能很低，需调整预期。

  

Q9：有推荐的Cas9 sgRNA骨架序列吗？

A9：本产品来源于野生型酿脓链球菌S.pyogenes。单导向RNA（sgRNA）骨架可使用

5’-NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNGUUUUAGAGCUAUGCUGAAAGCAUAGCAAGUUAAAAUAAGGCUAGUCCGUUAUCAACUUGAAAAAGUGGCACCGAGUCGGUG -3’

"N"代表与DNA靶标序列特异性结合的20个核苷酸序列。

 

推荐购买翌圣货号11355ES的sgRNA合成试剂盒Hifair^® Precision sgRNA Synthesis Kit。只需根据目标区域设计，纯化后的sgRNA产物可搭配Cas9使用。

四、编辑效率与检测

Q10：如何检测基因编辑效率？TIDE、T7E1、NGS怎么选？

A10：四种常用编辑效率检测方法对比：

实操推荐：(1) sgRNA初筛阶段→T7 Endonuclease I（Cat#14548E）快速粗筛（成本低，1天出结果）；(2) 确认高效sgRNA→TIDE或ICE精确定量；(3) 单克隆基因型鉴定→Sanger测序；(4) NGS深度测序提供权威数据。

  

Q11：编辑效率很低（TIDE <10%）——从哪些方面排查？

A11：按以下顺序系统性排查（从最常见到最罕见）：

(1) sgRNA设计问题（约占40%的失败案例）：重新设计3-4条sgRNA，靶向不同外显子。使用CHOPCHOP或CRISPick评估on-target score。

(2) 转染/电转效率低：用荧光蛋白NLS-Cas9-EGFP Nuclease （Cat#14707ES）作为阳性对照，验证基因递送效率是否>50%。

(3) 细胞类型问题：某些细胞类型天然难以编辑（如原代神经元、B细胞）。

(4) 检测方法问题：TIDE分析对测序峰图质量要求高——如果测序信号弱、背景高，TIDE结果不可靠。尝试用T7E1或ICE交叉验证。

(5) PAM位点多态性：靶序列在特定细胞系中可能存在SNP，导致sgRNA无法有效配对。PCR扩增靶位点后先测序确认序列与参考基因组一致。

五、脱靶控制

Q12：Cas9会不会切错位置？脱靶的风险有多大？

A12：会，但Cas9蛋白（RNP形式）的脱靶风险远低于质粒形式。原因：RNP在细胞内仅存活约12小时，而质粒表达的Cas9可持续数天甚至数周——Cas9存在时间越长，脱靶累积越多。

脱靶风险的决定因素：

(1) sgRNA序列特异性：这是最关键的因素。sgRNA与基因组其他位置存在≥15个连续匹配+相似PAM时，脱靶风险显著增加。

(2) Cas9浓度：Cas9蛋白过量会驱动低亲和力脱靶位点的切割。这就是我们推荐Cas9:sgRNA摩尔比1:1~1:3的原因——确保所有Cas9都被sgRNA结合，减少游离Cas9。

(3) Cas9蛋白形式：高保真Cas9变体（如HiFi Cas9 Nuclease (Cat#14704ES)通过蛋白工程减少了与非特异性DNA的相互作用，脱靶率比野生型SpCas9低10-100倍。

  

Q13：电转、脂质体、显微注射、LNP——我应该选哪种递送方式？

A13：

 

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产品应用	产品定位	产品名称	产品货号
基础基因编辑	野生型SpCas9	Cas9 Nuclease (10 mg/mL)	14701ES
低脱靶基因编辑	高保真Cas9	HiFi Cas9 Nuclease (5 mg/mL)	14704ES
单链切口编辑	切刻型Cas9（D10A）	Cas9 D10A Nickase (5 mg/mL)	14706ES
荧光示踪/流式分选富集	带EGFP标签的野生型SpCas9	NLS-Cas9-EGFP Nuclease (10 mg/mL)	14707ES
转录调控/染色质免疫沉淀	无剪切酶活性的Cas9	dCas9 Nuclease (10 mg/mL)	14705ES
AI设计高保真基因编辑	AI设计高保真Cas9类似物	OpenCRISPR-1 (10 mg/mL)	14703ES
恒温扩增/核酸检测	野生型Cas12a	ArCas12a Nuclease (10 μM)	14702ES
	野生型Cas12b	AapCas12b Nuclease (10 μM)	14808ES
Cas9 sgRNA体外合成	Cas9 sgRNA合成试剂盒	Hifair® Precision sgRNA Synthesis Kit	11355ES
基因编辑效率检测	基因编辑效率检测	T7 Endonuclease I (10 U/µL)	14548ES

参考文献

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[2] Bamundo M, Palumbo S, D'Auria L, et al. CRISPR/Cas9 Ribonucleoprotein Nucleofection for Genome Editing in Primary Human Keratinocytes. Current Protocols, 2024, 4(8): e70056.

[3] Efficient CRISPR-Cas9-Mediated Knock-In of Composite Tags in Zebrafish Using Long ssDNA as a Donor. Frontiers in Cell and Developmental Biology, 2020, 8: 598634.

[4] Generation of gene-of-interest double allele knockout clones in primary human T cells by CRISPR. Cell STAR Protocols, 2023, 4(3): 102411.

[5] Anders C, Niewoehner O, Duerst A, Jinek M. Structural basis of PAM-dependent target DNA recognition by the Cas9 endonuclease. Nature, 2014, 513: 569-573.

[6] Brinkman EK, et al. Easy quantitative assessment of genome editing by sequence trace decomposition. Nucleic Acids Research, 2014, 42(22): e168. (TIDE)

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