植物叶片RNA建库全解析
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2026-08-28
在植物分子生物学研究中,RNA建库是连接样本与测序分析的关键桥梁,也是解析基因表达、挖掘功能基因及探索生长发育机制的重要环节。植物叶片作为光合作用的主要器官,其RNA质量直接决定了转录组分析、基因克隆以及差异表达研究的可靠性。然而,叶片样本中富含多糖、多酚等杂质,且RNA极易被RNase降解,这给建库工作带来了不小的挑战。本文将全面解析植物叶片RNA建库的核心要素——所需试剂、仪器配置以及标准化实验步骤,为科研工作者提供高效、稳妥的实验参考,帮助减少实验失误、提升数据质量。
核心试剂清单
1. 样本前处理与RNA提取试剂
这一步的核心在于充分破碎叶片组织以释放RNA,并有效去除多糖、多酚等干扰物质,从而降低杂质对后续建库质量的影响。
⚪ RNA提取试剂盒:建议优先选择植物专用RNA提取试剂盒,通常内含裂解液、洗涤液和洗脱液等完整体系,能够高效裂解植物细胞,并通过硅胶膜或磁珠特异性结合RNA,有效去除蛋白质、多糖及部分多酚等杂质,操作简便、重复性好,新手也能轻松操作。部分试剂盒还支持配套Nase I处理,可在提取过程中同步去除基因组DNA污染,从而降低对后续建库和表达分析的干扰。
⚪ 液氮:用于样本的快速冷冻与低温研磨,在促进细胞结构破碎的同时,迅速抑制RNase活性,从而最大程度减少RNA降解,是植物RNA提取过程中不可或缺的关键条件。
⚪ RNase-free水:用于试剂配制及RNA洗脱的全过程,应确保无RNase及外源核酸污染。建议使用经过去离子、无菌过滤并标注为RNase-free的商品化超纯水。若自行处理,通常需结合DEPC处理并高压灭菌,但需注意规范操作以避免残留影响实验。
⚪ β-巯基乙醇(β-Mercaptoethanol):通常在使用前加入裂解液中,作为强还原剂可有效破坏RNase的二硫键结构,从而抑制其活性,保护RNA稳定性。对于富含多酚类物质的植物材料(如烟草、茶叶等),其作用尤为重要,有助于减少氧化反应带来的干扰。
2. 质量检测试剂
用于评估RNA浓度、纯度及完整性,确保样本符合建库要求。常用试剂包括:
⚪分光光度法检测液(如NanoDrop专用液),用于快速测定RNA浓度及A260/A280、A260/A230比值,以评估样品纯度;
⚪琼脂糖凝胶及核酸染料、电泳缓冲液、RNA上样缓冲液,适用于RNA完整性检测,通过凝胶电泳可直观观察rRNA条带及降解情况;
⚪高灵敏度RNA定量试剂盒,可精确定量低浓度RNA,适合下游文库构建前的严格检测。
3. 建库核心试剂
根据实验目的选择合适的建库策略,主流包括mRNA建库(富集mRNA)和全转录组建库(去除rRNA)。建库试剂需与策略匹配,以下为通用核心试剂,可适用于Illumina、华大智造等主流测序平台。
⚪ mRNA富集试剂(可选):用于mRNA建库的样本处理,通常采用带有Oligo(dT)的磁珠,利用mRNA的poly(A)尾特异性与磁珠结合,实现mRNA与rRNA、tRNA的分离,从而富集目标RNA片段。
⚪ rRNA去除试剂(可选):用于全转录组建库,可选择植物rRNA去除试剂,能够高效去除植物叶片中细胞质、线粒体及叶绿体的rRNA,同时保留编码RNA及多种非编码RNA,适合全转录组分析。
⚪ RNA建库试剂盒:通常包含RNA片段化、cDNA一链二链合成、接头连接以及PCR扩增试剂。片段化试剂可将RNA打断为适合测序的小片段。cDNA合成试剂可将RNA片段逆转录为双链cDNA,并为接头连接做好准备。接头连接步骤使用DNA连接酶,在DNA片段两端加上能够与测序仪配合的接头序列。PCR扩增试剂则通过高保真DNA聚合酶扩增接头连接后的cDNA,以获得足量文库产物,保证测序数据的准确性与稳定性。
⚪ 接头试剂盒:接头为cDNA片段提供测序识别序列和样本标签,便于测序仪识别并实现多样本混合测序。包含illumina和MGI等主流测序平台。接头包含长/短接头和单/双端接头,请根据自身需要选择合适的接头。
⚪ 定量试剂:dsDNA定量、ssDNA定量,准确测定单/双链DNA的浓度,为建库和测序提供定量依据。
⚪ 纯化磁珠:DNA纯化磁珠(用于PCR扩增后文库的纯化,去除多余的引物、dNTPs等杂质,常用磁珠纯化,确保文库片段均一性,符合测序要求。)、RNA纯化磁珠(rRNA去除后的磁珠纯化不是多余步骤,而是为了去杂质、浓缩RNA、保护样本,保证后续片段化、cDNA合成和建库反应高效、可靠。)
必备实验仪器
植物叶片RNA建库对仪器的精度和无RNase环境要求较高。核心仪器主要用于样本处理、RNA提取、片段化、文库扩增及质量检测。以下列出实验室常用设备,兼顾基础配置与高效需求,适用于不同规模的建库实验。
详细实验步骤
1. RNA提取:以磁珠法提取为例

2. RNA质量检测
纯度:用 NanoDrop 或紫外分光光度计测 RNA 纯度。OD260/280 的理想值在 1.8 - 2.1 之间,低于 1.8 说明有蛋白污染,高于 2.1 可能是 RNA 降解或胍盐残留。OD260/230 的比值应大于 2.0,低于 2.0 表明有盐或有机试剂残留。
完整性:总RNA完整性可通过琼脂糖凝胶或毛细管电泳评估。完整RNA表现为清晰28S/18S rRNA条带(亮度比约2:1)(如下图左),毛细管电泳可生成RIN或RQN评分(1–10),值越高表示RNA完整性越好,植物和微生物样本通常要求≥6(如下图右)。


浓度:Qubit精准测定浓度,计算后续建库投入量。
3. RNA建库
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3.1 RNA前处理-mRNA富集(可选)
该方法仅能富集携带poly(A)尾的mRNA,其他不具poly(A)尾的RNA,如非编码RNA、无poly(A)尾的mRNA等不适用本方法富集。FFPE样本中的mRNA降解严重,通常无完整的poly(A)尾结构,无法使用本方法进行富集。

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3.1 RNA前处理-RNase H法rRNA去除(可选)
RNase H法是一种基于核糖核酸酶H(RNase H)选择性降解DNA-RNA杂交链中RNA链的特性来去除rRNA的技术。适用于原核生物、降解样本或需全面覆盖非编码RNA的研究。rRNA种类包括:原核生物中5S rRNAs、16S rRNAs和23S rRNAs三种,真核生物中5S rRNAs、5.8S rRNAs、18S rRNAs和28S rRNAs四种。

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3.2 RNA片段化
高温、盐离子打断。在不同的温度条件下,加入一定浓度的二价盐离子(Mg2+),可将RNA打断至不同的片段大小,使得长度符合测序平台的读取要求。

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3.3第一链cDNA合成
使用逆转录酶和随机引物对片段化的RNA进行逆转录,逆转录为一链cDNA。反应体系配置好后,进行混匀和短暂离心,在PCR仪内完成下述反应程序,得到一链cDNA。

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3.4 第二链cDNA合成及末修/加A
使用RNase H产生缺口,从切口处以RNA为引物进行延伸,生成cDNA第二链,并完成末修加A。需要注意做普通转录组时,所使用的为2nd Strand Bufer (dNTP);做链特异转录组时,所使用的为2nd Strand,Bufer (dUTP)。

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3.5 接头连接
使用DNA连接酶,进行TA连接,在DNA片段两端加上能够与测序仪配合的接头序列。所加入的接头体积固定为5μL,应根据初始的RNA投入量将接头稀释至相应浓度,避免接头加入过多导致产生大量二聚体。

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3.6 产物纯化及分选
连接后纯化的目的是有效去除dNTP、引物、接头二聚体、盐离子和其它杂质。利用磁珠优先吸附大片段的原理,通过控制磁珠比例可选择性吸附特定大小的DNA,丢弃上清中的小片段及杂质,最终洗脱回收目标DNA。连接后的纯化步骤一般为必须步骤。

二代测序要求NGS文库达到特定长度,片筛的目的在于从文库中筛选出比较集中的目标文库。利用磁珠优先吸附大片段的特点,第一轮吸附大片段后弃磁珠留上清,目标片段在上清中。第二轮磁珠吸附目标片段,丢弃上清后洗脱回收目的片段。

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3.7 文库扩增及纯化
连接产物的总量一般较少,之所以引入PCR方法,是为了提高文库产量,放大DNA荧光信号,提高测序准确度。但文库扩增要根据投入量选择合适的循环数,避免出现过度扩增,导致最终的2100文库峰图出现大片段拖尾(不影响测序和数据分析)。文库扩增后需对PCR产物进行纯化,丢弃上清中的小片段及杂质,最终洗脱回收目标文库。

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3.8 文库质检
文库质检一般是包括文库定量和片段检测两方面。通常使用Qubit对文库进行初步浓度定量,在文库浓度符合上机需求后,再检测片段大小是否符合预期,其峰值大小应该是目的片段加上接头序列的总长度。一般片段大小的检测通常可以选择使用Agilent公司的2100 Bioanalyzer、Bioptic公司的Qseq系列等来进行检测。

常见问题
1. 文库峰型偏大或有大片段拖尾
RNA文库出现文库偏大或大片段残留现象,考虑RNA纯度外,建议适当延长片段化时间或提高片段化温度。另外,也需要选择合适的循环数,循环数过高会导致过度扩增,过度扩增文库会出现大片段残留。


2. 文库峰型偏小
RNA文库出现文库偏小现象,考虑过度片段化导致,建议适当缩短片段化时间或降低片段化温度。另外,也需要选择合适的分选比例,一轮分选磁珠比例过大,文库会出现偏小现象。

3. 文库出现小片段杂峰
这种情况可能是因为引物二聚体或者接头二聚体的出现所致。为保证测序数据的质量,可以通过减少接头/引物使用量,降低纯化磁珠的比例或二轮分选磁珠比例来解决。

4. 文库峰型双峰
RNA文库出现双峰现象,考虑连接酶连接效率过高导致,建议选用自连效率比较低的连接酶进行接头连接反应。

5. rRNA残留问题
mRNA建库存在rRNA残留,可能是因为部分rRNA含有内部poly(A)序列,被非特异性结合导致。rRNA去除建库,有rRNA残留,可能是某些rRNA亚型或变异序列未被探针覆盖;或样本质量太差,rRNA片段化严重无法被探针结合导致。如果rRNA残留>5%需要警惕。

结语
1. 样本前处理与RNA提取试剂
植物叶片RNA建库是一项“精细活”,试剂的精准搭配、仪器的规范使用、步骤的严格执行,三者缺一不可。随着测序技术的发展,建库流程逐渐简化,高通量、低成本的建库方案已广泛应用于植物研究中,无论是新手还是资深科研人,遵循上述指南,都能高效完成叶片RNA建库,为后续的转录组分析、基因功能研究筑牢基础。愿每一次实验都能收获高质量文库,解锁植物生长发育的神秘密码,助力科研之路稳步前行!
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