Hieff NGS® MaxUp rRNA Depletion Kit(Plant) MaxUp核糖体RNA去除试剂盒(植物)

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产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

Hieff NGS® MaxUp rRNA Depletion Kit (Plant)利用RNase H消化法去除植物来源总RNA中的核糖体RNA(包括细胞质18S25S rRNA,线粒体18S26S rRNA,叶绿体16S23S rRNA)以保留信使RNA (mRNA)和其它非编码RNA。该试剂盒对于完整和部分降解的总RNA均具有良好的rRNA去除效果。经rRNA去除所获得的RNA样本可用于高通量测序分析mRNA和非编码RNA,可显著提高测序结果中有效数据比例,也可用于cDNA合成或其它下游应用。

 

适用范围

适用于多种植物来源的100 ng~1 μg RNA样品;适用于完整或部分降解RNA样品。

 

产品组分

 

运输与保存方法

干冰运输,-20 °C存放。效期一年。

 

注意事项

1. 请使用无RNase污染的耗材,并对实验区域定期进行清理,推荐使用Thermo Fisher公司的RNAZapTM 高效核酸去除喷雾去除RNA酶污染。

2. RNA样品应不含基因组DNA污染,若样品中有gDNA残留,应先进行DNase I消化并纯化后再用于本试剂盒。

3. RNA样品最大投入体积为10 μL,若样品体积较大,可先进行浓缩。

4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

5. 本产品仅作科研用途!

 

自备材料

1. RNA纯化磁珠:Hieff NGS® Cleaner (Cat#12602)或其他等效产品。

2. qRT-PCR质检rRNA去除效率:Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix (No Rox) (Cat#11201)或其他等效产品。

3. 其他材料: 无水乙醇、无菌超纯水、低吸附枪头、PCR管、磁力架、PCR仪等。

 

操作步骤

1. 探针杂交

1.1 将探针和杂交Buffer-20 °C 取出,解冻后颠倒混匀,置于冰上备用。

1.2 准备RNA样品:根据投入量和样品浓度,计算RNA取样体积,用Nuclease free H2O稀释至11 μL

1.3 按照表1200 μL PCR管中配制rRNA去除反应体系。

1 探针杂交反应体系

名称

体积 (μL)

Hybridization Buffer

3

Probe Mix (Plant)

3

Total RNA

9100 ng~1 μg

Total

15

1.4 使用移液器轻轻吹打混匀,瞬离将反应液离心至管底。

1.5 将上述 PCR 管置于PCR仪中,按照表2所示反应程序,进行探针杂交反应。

2 探针杂交反应程序

温度

时间

热盖105°C

On

95 °C

2 min

95 °C-22 °C

0.1 °C/s

22 °C

5 min

4 °C

Hold

2. RNase H消化

2.1RNase H消化试剂从-20 °C取出,解冻后颠倒混匀,置于冰上备用。按照表3所示,配制RNase H消化反应体系。

3 RNase H消化反应体系

名称

体积 (μL)

RNase H Buffer

3

RNase H

2

上步产物

15

Total

20

2.2 使用移液器轻轻吹打混匀,瞬离将反应液离心至管底。

2.3 将上述 PCR 管置于PCR仪中,设置反应程序:热盖50°C37 °C30 min4°Chold,进行RNase H消化反应。

3. DNase I 消化

3.1DNase I消化试剂从-20 °C 取出,解冻后颠倒混匀,置于冰上备用。按照表4所示,配制DNase I消化反应体系。

4 DNase I消化反应体系

名称

体积 (μL)

DNase I Buffer

27.5

DNase I

2.5

上一步产物

20

Total

50

3.2 使用移液器轻轻吹打混匀,瞬离将反应液离心至管底。

3.3 将上述 PCR 管置于PCR仪中,设置反应程序:热盖50 °C37 °C30 min4 °Chold,进行DNase I消化反应。

4. RNA纯化

4.1 准备工作:将 Hieff NGS® RNA Cleaner (Cat#12602)磁珠由冰箱中取出,室温平衡至少 30 min。用Nuclease free H2O配制80%乙醇。

4.2 涡旋振荡或充分颠倒磁珠以保证充分混匀。

4.3 吸取110 μL Hieff NGS® RNA Cleaner (2.2×Beads:DNA=2.2:1)至上一步产物中,移液器充分吹打混匀,室温孵育 5 min

4.4 PCR管置于磁力架中分离磁珠和液体,待溶液澄清后(约3 min),小心移除上清。

4.5 保持PCR管始终置于磁力架中,加入 200 μL Nuclease free H2O新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠,室温孵育 30 sec 后,小心移除上清。

4.6 重复步骤 4.5,总计漂洗两次。用 10 μL移液器吸干净残留液体。

4.7 保持 PCR 管始终置于磁力架中,室温下开盖干燥磁珠 (5~10 min)

4.8 RNA洗脱:将PCR 管从磁力架上取下,加入 11 μL Nuclease free H2O(或使用适合下游实验的相应体积Nuclease free H2O或洗脱缓冲液),使用移液器轻轻吹打至充分混匀,室温静置 5 min

4.9  PCR管短暂离心并置于磁力架中静置,待溶液澄清后(约3 min),小心移取 10 μL 上清(可根据步骤4.7选择的实际洗脱体积进行相应调整)至新的Nuclease free PCR 管中。

【注】:洗脱后的样品请立即进行下游实验,或置于-80 °C存放。

 

案例展示

115种不同的植物样本,投入1μg进行RNA建库测试,rRNA的残留率如图1所示,rRNA残留率都在2%以内。

1 不同类型植物样本,rRNA的残留率检测。

2)不同客户返样的植物样本,投入1μg进行RNA建库测试,rRNA的残留率如图2所示,rRNA残留率都在2%以内。

2 不同客户返样植物样本,rRNA的残留率检测。

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吃饭v

 

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