Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix(Rox Provided Seperately)

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COA

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产品描述

Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix2×实时定量PCR扩增的预混合溶液Mix中含有热启动Hieff® DNA PolymeraseSYBR Green IdNTPs、Mg2+使用时,仅需在扩增体系中加入模板和引物即可进行实时荧光定量PCR,大大简化操作过程,降低污染几率本产品针对不同型号的实时荧光定量PCR仪,分别提供不同浓度的 Rox 参比液(High Rox/Low Rox),用于校正孔与孔之间的荧光信号误差。

本品采用的DNA聚合酶配体可以随温度变化实时调节DNA聚合酶活性。配方添加了有效抑制非特异性PCR扩增的因子和提升PCR反应扩增效率的因子,使定量PCR可以在宽广的定量区域内获得良好的线性关系。

 

产品组分

组分编号

组分名称

产品编号/规格

11204ES03

1 mL)

11204ES08

(5×1 mL)

11204ES50

(50×1 mL)

11204ES60

100×1 mL)

11204-A

Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix

1 mL

5 ×1 mL

50 ×1 mL

100 ×1 mL

11204-B

50×Low Rox

40 μL

200 μL

4 ×500 μL

8 ×500 μL

11204-C

50×High Rox

40 μL

200 μL

4 ×500 μL

8 ×500 μL

 

运输与保存方式

冰袋运输。-20避光储存,有效期18个月

本品避免反复冻融产品中含有荧光染料SYBR® Green I,保存或配制反应体系时需避免强光照射。

 

注意事项

1. 推荐使用本公司cDNA合成试剂盒(货号11123ES),以有效去除RNA样品中残留的基因组。

2. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。

3. 本产品仅作科研用途!

 

反应体系(推荐冰上配制)

组分

体积(μL)

体积(μL)

终浓度

Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix

25

10

Forward Primer (10 μM)

1

0.4

0.2 μM

Reverse Primer (10 μM)

1

0.4

0.2 μM

50×High or Low Rox

1

0.4

模板DNA

X

X

-

无菌超纯水

to 50

to 20

-

【注】 使用前务必充分混匀,避免剧烈震荡产生过多气泡。

a) 参比染料Rox的添加,可根据不同仪器型号进行选择,具体可参考【适用机型】。

b) 引物浓度:通常引物终浓度为0.2 μM,也可以根据情况0.1-1.0 μM之间进行调整。

c) 模板浓度:如模板类型为未稀释cDNA原液,使用体积不应超过qPCR反应总体积的1/10

d) 模板稀释cDNA原液建议5-10倍稀释,最佳模板加入量以扩增得到的CT值在20-30个循环为好。

e) 反应体系推荐使用20 μL或50 μL以保证目的基因扩增的有效性和重复性。

f) 体系配制请于超净工作台内配制,使用无核酸酶残留的枪头、反应管推荐使用带滤芯的枪头。避免交叉污染和气溶胶污染

 

扩增程序

三步法程序                                                                                                 两步法程序

循环步骤

温度

时间

循环数

 

循环步骤

温度

时间

循环数

预变性

95

5 min

1

 

预变性

95

5 min

1

变性

95

10 sec

40

 

变性

95

10 sec

 

退火

55-60

20 sec

 

退火、延伸

60

30 sec

40

延伸

72

20 sec

         

熔解曲线

  仪器默认设置

1

 

熔解曲线

仪器默认设置

1

【注】:高特异性可选择两步法高效率扩增可选择三步法

a) 预变性时间:根据不同模板和引物的具体情况可适当缩短至2 min。

b) 退火温度和时间:请根据引物和目的基因的长度进行调整。

c) 荧光信号采集():请参考仪器说明书设置。 

d) 解曲线通常情况下可以使用仪器默认程序。

 

结果分析

定量实验至少需要三个生物学重复反应结束后需要确认扩增曲线及解曲线。

1) 扩增曲线标准扩增曲线为S型。

Ct值落在20-30之间时,定量分析最准确

Ct值小于10需要将稀释模板后,重新进行验;

Ct值介于30-35之间时,需要提高模板浓度,或者增大反应体系的体积,以提高扩增效率,保证结果分析的准确性;

Ct值大于35时,检测结果无法定量分析基因的表达量,但可用于定性分析。

2) 熔解曲线:

熔解曲线单峰,表明反应特异性好可以进行定量结果分析;若解曲线出现双峰或者多峰,则不能进行定量分析。

熔解曲线出现双峰,需要通过DNA琼脂糖凝胶电泳判断非目标峰是引物二聚体还是非特异性扩增。

如果是引物二聚体,建议降低引物浓度,或者重新设计扩增效率高的引物。

如果是非特异性扩增,请提高退火温度,或者重新设计更高特异性的引物。

 

引物设计指南

1)推荐引物长度25 bp左右。扩增产物长度150 bp为佳,可以在100 bp-300 bp内选择。

2)正向引物和反向引物的Tm值相差不宜超过2引物Tm值60ºC-65ºC为佳。

3)引物碱基分布要均匀,避免出现连续的4个相同碱基,GC含量控制在50%左右。3’端最后一个碱基最好为G或C

4)引物内部或者正反两条引物间最好避免出现3个碱基以上的互补序列

5)引物特异性需要用NCBI BLAST程序进行核对。避免引物3’端有2个碱基以上的非特异性互补

6)设计完成的引物需要进行扩增效率的检测,只有具备相同扩增效率的引物才可用于定量比较分析

 

适用机型

High Rox适用机型 ABI 5700, 7000, 7300, 7700, 7900HT Fast, StepOne, StepOne Plus;

Low Rox 适用机型: ABI 7500, 7500 Fast, ViiA7, QuantStudio 3 and 5, QuantStudio6,7,12k Flex; Stratagene MX3000P, MX3005P, MX4000P;  

不需要Rox校正的仪器型号:

Bio-Rad CFX96, CFX384, iCycler iQ, iQ5, MyiQ, MiniOpticon, Opticon, Opticon 2, Chromo4;

Eppendorf Mastercycler ep realplex, realplex 2 s; Qiagen Corbett Rotor-Gene Q, Rotor-Gene 3000, Rotor-Gene 6000;

Roche Applied Science LightCycler 480, LightCycler 2.0; Lightcycler 96; Thermo Scientific PikoReal Cycler;

Cepheid SmartCycler; Illumina Eco qPCR. 

 

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货号

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HB220113

400-6111-883