核酸提取入门:做一个DNA提取,需要哪些试剂和仪器

核酸提取入门:做一个DNA提取,需要哪些试剂和仪器

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2026-10-09

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核酸提取是几乎所有分子生物学实验的第一步——从基础科研(如基因克隆、PCR检测)到临床诊断(如病原检测、遗传病筛查)再到生物制造(如重组蛋白生产、疫苗研发),高质量核酸是后续所有步骤得以顺利进行的根本前提。很多实验新手在设计课题时往往低估了核酸提取的重要性,等到下游实验反复失败时才意识到问题出在提取环节。因此,系统掌握DNA提取全流程所需的试剂和仪器,建立完整的实验认知框架,对实验成功至关重要。

【01】
DNA提取的基本原理与技术路线

DNA提取的基本原理可概括为四步:裂解 → 分离 → 洗涤 → 洗脱。裂解是通过物理(研磨、超声)、化学(SDS、CTAB)或酶促(蛋白酶K、溶菌酶)手段破坏细胞结构释放核酸分子;分离是利用核酸与杂质(蛋白质、脂类、多糖)在特定溶剂中的溶解度差异将其分开;洗涤通过乙醇或盐溶液去除残留杂质;洗脱则是在低盐条件下将核酸从固相介质上释放出来。根据分离原理的不同,DNA提取方法可分为三大主流技术路线:酚/氯仿抽提法、柱式法和磁珠法。

1、酚/氯仿抽提法:经典的全景提取

酚/氯仿抽提法是历史最悠久的方法,利用酚使蛋白质变性、氯仿加速有机相与水相分离的特性,将DNA保留在水相中。标准操作流程为:细胞或组织裂解 → 加等体积酚/氯仿(1:1)振荡混匀 → 高速离心→ 取上层水相 → 加乙醇或异丙醇沉淀DNA → 70%乙醇洗涤 → 溶解于TE或纯水。

该方法的优势在于分离效果彻底,对蛋白质和脂类的去除效率很高,提取的DNA纯度高,适合对模板质量要求极高的应用(如构建基因组文库、转化感受态细胞制备)。但缺点同样明显:操作步骤多、耗时长,需要使用酚、氯仿等有毒有机溶剂,废液处理要求高,对新手不够友好。

2、柱式法:便捷高效的靶向吸附

柱式法是目前应用最广泛的商品化方案,其核心是装有硅胶膜或离子交换树脂的离心柱。在高盐条件下,DNA分子带负电荷,可逆性地吸附于硅胶膜上,而蛋白质和其他杂质不被吸附而直接流穿;低盐缓冲液洗涤后,用弱碱性溶液(pH 8.0-8.5的EB或纯水)即可将DNA洗脱下来。

柱式法的优点是操作简单、全程无需酚氯仿、提取速度快,适合大多数常规样本(如血液、动物组织、培养细胞)。但其局限性在于:不适合处理高黏度样本(如多糖含量高的植物组织、高脂样本),离心步骤对设备有一定要求,且膜吸附能力存在上限,不适合大量DNA的制备。

图1 硅胶膜离心柱法核酸提取流程(图片来源:网,侵删)

3、磁珠法:自动化友好的新兴方案

磁珠法是近年来快速普及的新方案,尤其在临床检验和NGS样本处理领域已成为主流选择。磁珠表面修饰的硅羟基在特定盐离子条件下可特异性吸附DNA,加热或改变pH即可洗脱,全程无需离心。对于新手而言,磁珠法最大的优点是“肉眼可见”——磁珠聚集和重悬的状态可以直观判断,操作失败时容易发现是哪一步出了问题。

磁珠法的优势在于易于自动化、可处理微量样本、适合复杂样本(如粪便、土壤、血液),且不依赖高速离心设备。挑战在于磁珠和缓冲液的成本较高,操作中需要避免磁珠干燥,且对移液精度有一定要求。

【02】
DNA提取的通用试剂与仪器

基础试剂包括:蛋白酶K(注意于-20℃保存,新配或分装后避免反复冻融);SDS或CTAB裂解缓冲液(SDS适合大多数动物组织;CTAB适合植物组织和含多糖的样本);NaCl(调节离子强度,影响DNA在溶液中的溶解度);EDTA(螯合Mg²⁺和Ca²⁺,抑制DNase活性);Tris-HCl(pH 8.0,DNA缓冲液的基质成分);RNase A(降解RNA,37℃孵育30分钟);无水乙醇和70%乙醇(用于DNA沉淀和洗涤);异丙醇(沉淀效率更高,但残留比乙醇更难挥发)。

仪器设备包括:离心机(常温/冷冻,配备1.5 mL和15 mL离心管适配器);涡旋振荡器(用于裂解时的充分混匀);恒温水浴锅或金属浴(提供55℃-65℃的裂解温度,组织DNA提取通常需要55℃过夜或65℃ 1-3小时);组织研磨仪(对纤维性组织、骨组织等难以手动研磨的样本尤为必要);超净台(提供无酶操作环境,防止环境污染);-80℃超低温冰箱(用于保存新鲜组织样本);核酸电泳仪(琼脂糖凝胶电泳)和凝胶成像系统(用于检测DNA完整性)。

【03】
DNA提取后的质量评估与保存

DNA提取完成后,必须进行质量评估再用于下游实验。主要评估指标有三项:

浓度:Qubit荧光定量法比紫外分光光度法更准确,因为后者会将其他吸收260 nm波长的分子(如酚、RNA)也计入读数。

纯度:OD260/280 = 1.8-2.0为合格,<1.8提示蛋白质污染,>2.0提示RNA残留或测量问题;OD260/230应>1.8,过低提示有酚、EDTA或糖类残留。

完整性:0.8%琼脂糖凝胶电泳,完整基因组DNA应为主条带>10 kb,无明显降解 smear。

对于基因组DNA的长期保存,建议溶解于TE缓冲液(pH 8.0)而非纯水——TE中的EDTA可螯合微量DNase的辅因子Mg²⁺,有效抑制DNA降解。若需长期保存,应将DNA分装为多管,避免反复冻融。

【04】
总结

DNA提取是分子生物学实验的基石,选择合适的提取方法和配套试剂仪器,直接决定了下游实验的成败。从经典的酚/氯仿抽提到便捷的柱式法,再到适合自动化与复杂样本的磁珠法,每种技术路线都有其独特的优势和适用场景。实验新手应从自身样本类型和实验目的出发,参考本文梳理的试剂仪器清单和方法对比,合理选择提取方案,并严格执行质量评估与保存规范。随着NGS和自动化技术的普及,磁珠法正逐步成为主流,但柱式法和酚/氯仿法在特定场景中仍不可替代。掌握这些基础知识,将为您后续的分子生物学实验打下坚实根基。

翌圣生物核酸提取试剂选购指南

类别

产品名称

货号

主要应用

磁珠法DNA提取

磁珠法土壤/粪便DNA提取试剂盒

18526ES

宏基因组

磁珠法细菌/真菌DNA提取

18565ES

细菌、真菌鉴定

磁珠法血液DNA提取

18504ES

适合遗传、肿瘤检测、用药指导

磁珠法干血斑DNA提取

18554ES

适合遗传、肿瘤检测

磁珠法FFPE DNA提取

18375ES

肿瘤检测

磁珠法血浆、血清游离 DNA 提取

18382ES

肿瘤检测、早筛、NIPT

磁珠法动物组织DNA提取

18391ES

基因组研究

磁珠法通用植物DNA提取

18529ES

植物育种、植物基因组研究

磁珠法RNA提取

磁珠法组织/细胞总RNA提取

18605ES

转录组分析、基因表达分析

磁珠法植物RNA提取

18534ES

植物转录组分析、基因表达分析

柱式法RNA提取

总RNA提取(带离心柱)

19211ES

科服转录组分析、Northern、点杂交、mRNA纯化等分子实验

细胞/组织总RNA提取

19221ES

培养细胞RNA提取

19231ES

血液RNA提取

19241ES

血液基因表达分析

植物RNA提取

19291ES

植物转录组分析、基因表达分析

多糖多酚植物RNA提取

19292ES

细菌RNA提取

19301ES

细菌表达谱分析

细胞/组织miRNA提取

19331ES

小RNA分析

血清/血浆miRNA提取

19332ES

小RNA分析

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