血管生成实验案例八
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2026-04-02
实验所用产品
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产品货号 |
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40186ES |
一、实验前准备与基质胶铺板
基质胶解冻:将储存于–20℃或–80℃的基质胶转移至4℃冰箱完全解冻(可过夜放置)。
器材预处理:准备4℃预冷枪头用于吸取基质胶。实验前将24孔板置于冰盒中,并进行紫外照射消毒。
基质胶稀释:如需稀释,按说明书要求使用无双抗且不含FBS的DMEM高糖培养基进行稀释。
铺板与预处理:将完全解冻的基质胶置于冰盒上,轻轻翻转混匀。使用预冷枪头,在24孔板每孔中心加入10–20 μL基质胶,操作时避免触及孔壁,并轻轻涂抹成圆形。在孔板间隙加入PBS防止蒸发,随后将铺胶后的孔板放入密封袋,于4℃静置过夜。
凝胶固化:12小时后取出孔板,置于37℃、5% CO₂ 培养箱中静置 30分钟,使胶体聚合稳定。
二、HUVEC细胞准备与接种
细胞来源与状态:选取生长状态良好的第3–5代HUVEC细胞,待其密度达到约80% 时进行处理。
细胞饥饿处理:将完全培养基更换为含0.2% FBS的DMEM培养基,持续培养24小时进行饥饿处理,使细胞周期同步化。
细胞消化与重悬:饥饿处理结束后,消化细胞,收集细胞悬液并进行精确计数。使用含10% FBS的DMEM培养基重悬细胞。
细胞接种:将细胞悬液以每孔 1.5×10⁵个 细胞、500 μL/孔的密度接种到预先凝固的凝胶基底上。接种时注意垂直缓慢加入细胞悬液,避免破坏胶体结构。轻轻晃动孔板使细胞分布均匀。
三、培养、观察与表型记录
孵育:将接种细胞的24孔板置于37℃、5% CO₂ 培养箱中继续培养。
动态观察:分别于2、4、6、8小时等时间点,在倒置显微镜下观察并记录管状结构形成情况。应详细记录细胞贴壁伸展、线性连接、管状网络形成等关键形态学变化的时间点。
四、实验结果
| 图1:2h培养情况 | 图2:4h培养情况 | 图3:6h培养情况 |
(数据来源:重庆医科大学)
血管生成实验小贴士
细胞状态:推荐使用3-5代细胞,可进行血清饥饿同步化;
基质胶:全程冰上操作,铺胶轻柔均匀;
细胞接种:使用单细胞悬液,并精确计数,轻柔加样;
观察:建议通过预实验确定最佳观察时间点,以捕获网络成熟期。





