血管生成实验案例六
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2026-04-02
实验所用产品
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产品货号 |
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40186ES |
一、实验前准备与基质胶铺板
基质胶解冻:实验前,将Ceturegel®基质胶从-20℃或-80℃冰箱取出,转移至4℃冰箱过夜,使其完全解冻。
器材预冷与消毒:准备一盒4℃预冷的枪头用于吸取基质胶。实验开始前,将24孔板放置于冰盒中,一同置于紫外灯下照射消毒。
基质胶稀释:根据产品说明,用不含双抗和FBS的DMEM高糖培养基对基质胶进行稀释。
铺板与预处理:将完全解冻的基质胶放于冰盒上,轻轻翻转几次混匀。取出预冷的枪头与24孔板置于冰上,使用200 μL枪头向每孔中加入 10-20 μL 稀释后的冷基质胶。用枪头轻轻将胶抹开成圆形,注意不要碰到孔板边缘,避免胶体浪费。在24孔板间隙加入PBS,以防止培养基蒸发。将铺胶后的24孔板放入干净的密封袋中,置于4℃冰箱过夜。
凝胶固化:过夜处理后(约12小时),取出24孔板,转移至37℃、5% CO₂ 的细胞培养箱中,静置 30分钟,以促进凝胶聚合和稳定。
二、HUVEC细胞准备与接种
细胞来源与状态:使用3-5代、状态良好的HUVEC细胞,实验前24小时细胞密度达到约80%。
细胞饥饿处理:将完全培养基置换为仅含0.2% FBS的DMEM培养基,培养24小时进行饥饿处理,使细胞周期同步化。
细胞消化与重悬:饥饿处理结束后,吸去培养液上清,用PBS清洗细胞。加入含EDTA的胰蛋白酶溶液进行消化,解除细胞间粘连。收集细胞悬浮液,通过细胞计数仪进行精确计数。使用含10% FBS的DMEM培养基重悬细胞。
细胞接种:将细胞悬液以每孔 1.5×10⁵个 细胞、500 μL/孔的浓度接种到预先凝固的凝胶基底上。接种时注意保持枪头垂直,缓慢加入细胞悬液,避免冲击力损伤凝胶材料。轻轻晃动孔板使细胞分布均匀。
三、培养、观察与表型记录
孵育:将接种细胞的24孔板置于37℃、5% CO₂ 培养箱中继续培养。
动态观察:在接种后的 2、4、6、8小时 等时间点,使用倒置显微镜观察HUVEC成管情况。应详细记录细胞贴壁伸展、线性连接、管状网络形成等关键形态学变化的时间点。
四、实验结果
| 图1:2h培养情况 | 图2:4h培养情况 | 图3:6h培养情况 |
(数据来源:重庆医科大学)
血管生成实验小贴士
细胞状态:推荐使用3-5代细胞,可进行血清饥饿同步化;
基质胶:全程冰上操作,铺胶轻柔均匀;
细胞接种:使用单细胞悬液,并精确计数,轻柔加样;
观察:建议通过预实验确定最佳观察时间点,以捕获网络成熟期。





