血管生成实验案例十一
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2026-04-02
实验所用产品
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产品货号 |
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40186ES |
一、实验前准备与基质胶铺板
基质胶解冻与耗材预冷:提前将Ceturegel®基质胶从-20℃冰箱取出,置于冰上,放入4℃冰箱过夜解冻。同时将24孔板、10 μL和200 μL枪头、冰盒等放入-20℃预冷。
全程低温操作:所有涉及基质胶的步骤均在冰上进行。将完全解冻的基质胶置于冰上,轻轻翻转混匀。
基质胶稀释与铺板:使用预冷枪头,用DMEM基础培养基按1:1体积比稀释基质胶,混合均匀。在预冷的24孔板中,孔间隙加入PBS,防止胶体在后续孵育过程中干裂。向每孔中央垂直滴加20 μL稀释后的基质胶原液。用200 μL枪头轻轻推动胶滴使其均匀分布(不用摊太开,后续4℃过夜会自然流平)。
预处理与固化:将铺胶后的24孔板装入密封袋,平放于4℃冰箱过夜,使胶体自然流平。次日取出孔板,转移至37℃培养箱中孵育30分钟,使基质胶完全凝固。
二、HUVEC细胞准备与接种
细胞状态:使用第3-5代HUVEC细胞,培养至24小时内达到80%左右融合度。
细胞饥饿处理:将完全培养液更换为含0.2% FBS的DMEM培养液,继续培养24小时,使细胞周期同步化。
细胞药物预处理:饥饿处理结束后,根据实验设计,对细胞进行药物预处理6-8小时。
细胞消化与重悬:药物处理结束后,消化细胞,离心收集。使用含对应药物的完全培养基重悬细胞,进行精确计数。调整细胞浓度至2.0×10⁵个/mL(即20万细胞/毫升)。
细胞接种:待基质胶完全凝固后,小心吸弃孔内可能存在的液体。向每孔凝胶表面加入500 μL细胞悬液,即每孔接种1.0×10⁵个细胞(10万细胞/孔)。轻轻晃动孔板使细胞分布均匀。
三、培养、观察与表型记录
孵育:将接种细胞的24孔板置于37℃、5% CO₂、90%湿度的培养箱中培养。
动态观察:在接种后的0、2、4、6、8、9、12小时等时间点,使用倒置显微镜观察并拍照记录。具体成管最佳时间可通过预实验进行摸索,一般3-12小时可见血管网络形成,成管时间与细胞状态密切相关。应详细记录细胞贴壁伸展、管状网络形成及成熟等关键形态学变化的时间点。
四、实验结果
| 图1:明场显微镜图像 | 图2:荧光染色结果
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(数据来源:大连理工大学)
血管生成实验小贴士
细胞状态:推荐使用3-5代细胞,可进行血清饥饿同步化;
基质胶:全程冰上操作,铺胶轻柔均匀;
细胞接种:使用单细胞悬液,并精确计数,轻柔加样;
观察:建议通过预实验确定最佳观察时间点,以捕获网络成熟期。





