Hieff NGS® DNA Library Prep Kit是针对Illumina®和MGI®高通量测序平台专业开发设计的新一代建库试剂盒。本产品采用高质量的酶学组成,在前一代建库试剂盒的基础上,改进了DNA片段末端修复和加A效率,同时改善了接头连接效率。本试剂盒采用新型的高保真酶,显著提高扩增均一性和保真性,可应用于常规动植物基因组、微生物基因组、FFPE、cfDNA、ChIP DNA等样本,助力获得优异的测序数据。
产品组分
组分编号 |
|
组分名称 |
13577ES08 |
13577ES24 |
13577ES96 |
||
13577-A |
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Endprep Buffer |
56 μL |
168 μL |
672 μL |
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13577-B |
|
Endprep Enzyme |
24 μL |
72 μL |
288 μL |
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13577-C |
|
Ligation Enhancer |
240 μL |
720 μL |
3×960 μL |
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13577-D |
Rapid T4 DNA Ligase |
80 μL |
240 μL |
2×480 μL |
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13577-E |
Canace® Pro Amplification Mix |
200 μL |
600 μL |
3×800 μL |
运输与保存方法
干冰运输。-25~-15 °C保存,有效期1年。
注意事项
一、关于操作
1. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
2. 请于使用前将试剂盒各组分置于室温解冻。解冻后上下颠倒数次充分混匀,短暂离心后置于冰上待用。
3. 配制各步骤反应液时推荐使用移液器吹打混匀或轻轻振荡,剧烈振荡可能会造成文库产出下降。
4. 为避免样品交叉污染,推荐使用带滤芯的枪头,吸取不同样品时请更换枪头。
5. 推荐在带热盖的PCR仪中进行各步骤反应,使用前应预热PCR仪至反应温度附近。
6. PCR产物因操作不当极容易产生气溶胶污染,进而影响实验结果准确性。推荐将PCR反应体系配制区和PCR产物纯化检测区进行强制性的物理隔离;使用专用的移液器等设备;并定时对各实验区域进行清洁(使用0.5%次氯酸钠或10%漂白剂进行擦拭清理),以保证实验环境的洁净度。
7. 本产品仅作科研用途!
二、关于DNA片段化
1. 本试剂盒中兼容机械法及酶切法片段化的DNA。
2. 本试剂盒兼容范围为100 pg - 1000 ng Input DNA。应尽可能使用A260/A280 = 1.8-2.0的高质量Input DNA。表1中列举了将本试剂盒应用于常见应用中推荐的Input DNA量。
表1 常见应用中推荐Input DNA量
应用 |
样本类型 |
推荐Input DNA量 |
全基因组测序 |
复杂基因组 |
50 ng-1000 ng |
靶向捕获测序 |
复杂基因组 |
10 ng-1000 ng |
全基因组测序,靶向捕获测序 |
FFPE DNA |
50 ng-1000 ng |
全基因组测序,靶向捕获测序 |
cfDNA/ctDNA |
≥500 pg |
全基因组测序 |
微生物基因组 |
≥1 ng |
全基因组测序PCR-free测序 |
高质量DNA |
≥50 ng |
【注】:上表为使用高质量DNA时推荐的Input DNA量,当Input DNA质量较差或需要进行片段分选时,应适当上调使用量。
3. Input DNA特指投入末端修复/dA尾添加步骤中的DNA。
4. Input DNA制备过程中带入的高浓度金属离子螯合剂或其他盐,可能会影响末端修复/dA尾添加步骤反应效率,建议DNA片段化后进行磁珠纯化或分选。当使用机械法进行DNA片段化且产物不进行纯化或长度分选而直接建库时,请将DNA稀释在TE Buffer中进行片段化,请勿在灭菌超纯水中进行。
三、关于接头连接(Adapter Ligation)
1. 针对Illumina®测序平台,Yeasen提供Hieff NGS® Complete Adapter Kit for Illumina®, Set 1~Set 2 (Cat#13519~Cat#13520),试剂盒中的接头浓度为15 μM;Hieff NGS® 384 CDI Primer for Illumina®(Cat#12412~Cat#12413),试剂盒中的接头浓度为
15 μM;Hieff NGS® Stubby UDI Primer Kit for Illumina® (Cat#12404~Cat#12407),试剂盒中的接头浓度为15 μM;Hieff NGS® Dual UMI UDI Adapter Kit for Illumina®,Set1~Set2 (Cat#13370~Cat#13371),试剂盒中的接头浓度为15 μM。
2.针对MGI® 高通量测序平台,Yeasen提供了Hieff NGS® Complete Adapter Kit for MGI®,Set 1~Set 3(Cat#13360 ~ Cat#13362),试剂盒中的接头浓度为10 μM;Hieff NGS® 384 CDI Primer for MGI®,Set 1~Set 2(Cat#13363 ~ Cat#13364),试剂盒中的接头浓度为10 μM;也可搭配Hieff NGS® Dual UMI UDB Adapter Kit for MGI®,Set 1~Set 2 (Cat#13367~Cat#13368)双端UMI UDB短接头,试剂盒中的接头浓度为10 μM。
3. Adapter的质量和使用浓度直接影响连接效率及文库产量。Adapter用量过高可能会产生较多Adapter Dimer;用量较低可能会影响连接效率及文库产量;使用Adapter时根据Input DNA量用TE Buffer进行相应稀释。
表2列举了使用本试剂盒的不同Input DNA量推荐的针对Illumina®测序平台的Adapter稀释方法。
表3列举了使用本试剂盒的不同Input DNA量推荐的针对MGI®测序平台的Adapter稀释方法。
表4列举了使用本公司Hieff NGS® Dual UMI UDI Adapter Kit for Illumina®,Set1~Set2 (Cat#13370~Cat#13371)的不同Input DNA量推荐的UMI Adapter稀释方法。
表5列举了使用本公司Hieff NGS® Dual UMI UDB Adapter Kit for MGI®,Set 1~Set 2 (Cat#13367~Cat#13368)的不同Input DNA量推荐的UMI Adapter稀释方法。
表2 100 pg-1 μg Input DNA针对Illumina®测序平台推荐的Adapter使用浓度
Input DNA |
Adapter稀释倍数 |
浓度 |
0.1ng ~ 1 ng |
150倍稀释 |
0.1 μM |
1 ng ~ 10 ng |
75倍稀释 |
0.2 μM |
10 ng ~ 25 ng |
15倍稀释 |
1 μM |
25 ng ~ 100 ng |
7.5倍稀释 |
2 μM |
100 ng ~ 1000 ng |
3倍稀释 |
5 μM |
表3 100 pg-1ug Input DNA针对MGI®测序平台推荐的Adapter使用浓度
Input DNA |
Adapter稀释倍数 |
浓度 |
0.1ng ~ 1 ng |
100倍稀释 |
0.1 μM |
1 ng ~ 10 ng |
50倍稀释 |
0.2 μM |
10 ng ~ 25 ng |
10倍稀释 |
1 μM |
25 ng ~ 100 ng |
5倍稀释 |
2 μM |
100 ng ~ 1000 ng |
2倍稀释 |
5 μM |
表4 100 pg-1ug Input DNA针对Illumina®测序平台推荐的UMI Adapter使用浓度
Input DNA |
Adapter稀释倍数 |
浓度 |
0.1ng ~ 1 ng |
150倍稀释 |
0.1 μM |
1 ng ~ 10 ng |
75倍稀释 |
0.2 μM |
10 ng ~ 25 ng |
15倍稀释 |
1 μM |
25 ng ~ 100 ng |
7.5倍稀释 |
2 μM |
100 ng ~ 1000 ng |
3倍稀释 |
5 μM |
表5 5 ng-1ug Input DNA针对MGI®测序平台推荐的UMI Adapter使用浓度
Input DNA |
Adapter稀释倍数 |
浓度 |
5 ng ~ 25 ng |
50倍稀释 |
0.2 μM |
25 ng ~ 100 ng |
10倍稀释 |
1 μM |
100 ng ~ 1000 ng |
4倍稀释 |
2.5 μM |
四、关于磁珠纯化与分选 (Bead-based Clean Up and Size Selection)
1. DNA片段长度分选步骤可选择在末端修复/dA尾添加之前,或接头连接后,或文库扩增后进行。
2. 当Input DNA质量≥50 ng,您可选择在接头连接后分选;如Input DNA质量<50 ng,建议您在文库扩增后进行分选。
3. Ligation Enhancer中包含高浓度的PEG,会对双轮磁珠分选产生显著影响。因此,如在接头连接后进行长度分选,必须先进行纯化步骤,再进行双轮分选步骤;如在末端修复/dA尾添加之前或文库扩增后进行长度分选,可直接进行双轮磁珠分选步骤。
4. 磁珠使用前应先平衡至室温,否则会导致得率下降、分选效果不佳。
5. 磁珠每次使用前都应充分振荡混匀或使用移液器上下吹打充分混匀。
6. 转移上清时,请勿吸取磁珠,即使微量残留都将影响后续文库质量。
7. 磁珠漂洗使用的80%乙醇应现用现配,否则将影响回收效率。
8. 进行长度分选时,初始样品体积应尽量≥100 μL,不足时请用超纯水补齐。以防因样品体积太小导致移液误差增大。
9. 产物洗脱前应将磁珠置于室温干燥。干燥不充分容易造成无水乙醇残留影响后续反应;过分干燥又会导致磁珠开裂进而降低纯化得率。通常情况下,室温干燥3-5 min足以让磁珠充分干燥。
10. DNA纯化或长度分选产物如需保存,可使用TE Buffer洗脱,产物可于4 °C可保存1-2周,-20 °C可保存1个月。
五、关于文库扩增 (Library Amplification)
1. 是否需要进行文库扩增取决于Input DNA量、Adapter是否为完整长度、应用需要等因素。如使用非完整长度Adapter,必须进行这一步骤。如使用完整长度Adapter,当Input DNA<200 ng时,推荐进行文库扩增;当Input DNA≥200 ng或者不需要进行文库扩增时,可不进行文库扩增。
2. 文库扩增步骤需要严格控制扩增循环数。循环数不足,将导致文库产量低;循环数过多,又将导致文库偏好性增加、重复度增加、嵌合产物增加、扩增突变积累等多种不良后果。表6列举了使用本试剂盒,获得1 μg文库的推荐循环数。
表6 100 pg-1000 ng Input DNA获得1 μg产物扩增循环数推荐表
Input DNA |
1 μg文库产量推荐PCR循环数 |
1000 ng |
2 - 4 |
500 ng |
2 - 4 |
250 ng |
4 - 6 |
100 ng |
5 - 7 |
50 ng |
7 - 9 |
10 ng |
9 - 11 |
5 ng |
10 - 12 |
1 ng |
12 - 15 |
100 pg |
16 - 18 |
【注】:
六、关于文库质检 (Library Quality Analysis)
1. 通常情况下,构建好的文库可通过长度分布检测和浓度检测来进行质量评价。
2. 文库浓度检测可使用:基于双链DNA荧光染料的方法,如Qubit®、PicoGreen®等;基于qPCR绝对定量的方法。
3. 文库浓度检测不可使用:基于光谱检测的方法,如NanoDrop®等。
4. 推荐使用qPCR方法进行文库浓度检测:Qubit®、PicoGreen®等基于双链DNA荧光染料的浓度测定方法时,无法有效区分单端连接Adapter的产物、两端均未连接Adapter的产物以及其他不完整双链结构产物;qPCR绝对定量基于PCR扩增原理,仅定量样品中两端Adapter完整的文库(即可测序的文库),可排除单端或双端都不连接Adapter的不可测序文库的干扰。
5. 文库长度分布检测,可通过Agilent Bioanalyzer 2100等基于毛细管电泳或微控流原理的设备进行检测。
自备材料
1. 纯化磁珠:Cat#12601,Hieff NGS® DNA Selection Beads或Cat#A63880,AMPure XP Beads或其他等效产品。
2. DNA质控:Agilent Technologies 2100 Bioanalyzer或其他等效产品。
3. DNA Adapter:可选Yeasen 官网的illumina平台接头Hieff NGS® Complete Adapter Kit for Illumina®, Set 1~Set 2 (Cat#13519~Cat#13520);双端384种CDI Primers:Hieff NGS® 384 CDI Primer for Illumina®, Set 1~Set 2 (Cat#12412~Cat#12413);双端384种UDI Primers:Hieff NGS® Stubby UDI Primer Kit for Illumina® (Cat#12404~Cat#12407),Hieff NGS® Dual UMI UDI Adapter Kit for Illumina®,Set1~Set2 (Cat#13370~Cat#13371)DNA 文库构建专用配套试剂盒,或者可选匹配MGI平台的接头:Hieff NGS® Complete Adapter Kit for MGI®,Set 1~Set 3(Cat#13360 ~ Cat#13362);Hieff NGS® 384 CDI Primer for MGI®,Set 1~Set 2(Cat#13363 ~ Cat#13364);Hieff NGS® Dual UMI UDB Adapter Kit for MGI®,Set 1~Set 2 (Cat#13367~Cat#13368);接头详细介绍信息参考上面注意事项中的第三部分“关于接头连接”。
DNA Primer Mix:Cat#12190,DNA Library Prep Primer Mix for Illumina® 或Cat#12191,DNA Library Prep Primer Mix for MGI®。
4.其他材料:无水乙醇、灭菌超纯水、TE Buffer (10 mM Tris-HCl,pH 8.0-8.5+1 mM EDTA)、低吸附EP管、PCR管、磁
力架、PCR仪等。
操作流程
图1 Hieff NGS® DNA Library Prep Kit操作流程
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