产品简介
SulfoLink Coupling Agarose Resin是一类预活化的琼脂糖树脂,其纯化原理在于可以通过与巯基的反应实现抗原的固定化,进而利用抗原抗体的特异性反应对免疫血清中的抗体进行高效纯化,是多克隆抗体生产中不可缺少的纯化介质。
产品性质
基质(Matrix) |
4%琼脂糖微球 |
配体(Ligand) |
碘乙酸衍生物 |
粒径(Bead size) |
45-165 µm |
载量(Capacity) |
4.0-6.0 mg HC-7多肽/mL基质 |
最大压力(PressureMax) |
0.1 MPa, 1 bar |
pH稳定范围(pH range) |
5-10 |
储存缓冲液(Buffer) |
1 M NaCl溶液 |
储存条件
2~8℃保存,有效期2年。
使用说明
所用水和Buffer在使用之前建议用0.22 μm或0.45 μm滤膜过滤。
偶联液:50 mM Tris,5 mM EDTA-Na,pH 8.5
封闭液:50 mM Tris,5 mM EDTA-Na,50 mM L-半胱氨酸,pH 8.5
保护液:含20%乙醇的1×PBS
平衡/洗杂液:150 mM NaCl,20 mM Na2HPO4,pH 7.0
洗脱液:0.1 M 甘氨酸,pH 3.0
中和液:1 M Tris-HCl,pH 8.5
纯化样品在上样前建议用0.22 μm或0.45 μm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。
使用偶联液溶解抗原,制备成终浓度为 1-3 mg/mL的抗原溶液。建议该溶液现用现配,储存时间过长会影响偶联效果。
注:① 抗原样品使用前务必确保其巯基处于还原状态(可以使用 DTNB(Ellman's Reagent)(Cat#60306ES)检测自由巯基的含量)。如果巯基已经氧化,必须对抗原样品进行还原,一般推荐使用还原剂 TCEP hydrochloride(Cat#20330ES),TCEP 溶液很稳定,可以选择性的、高效的打开抗原中的二硫键,并且不影响抗原与树脂的偶联反应,每毫克抗原中 TCEP 的添加量不超过12 mg,具体使用量需要自行优化。
② 如果使用 DTT 等含有巯基的还原剂,处理完样品必须要将还原剂去除,否则会影响抗原与树脂的偶联效率。
1)取适量SulfoLink Coupling Agarose Resin,加入到合适的重力柱中,靠重力流干保护液,用3倍柱体积的偶联液平衡树脂,待偶联液流干,再加入3倍柱体积的偶联液,重复操作 2遍。共使用9倍柱体积的偶联液。
2)关闭柱子的下端出口,加入等体积的含巯基的抗原,混匀,取出至合适的离心管中,置于28℃震荡孵育30 min。
注:确保树脂充分悬浮起来,否则将大大影响偶联效率。
3)将上述反应体系取出,转移至重力柱中,流干其中溶液,并收集流出液,再用3倍柱体积的偶联液清洗树脂,合并两次流出液。
注:如有需要,可以使用Ellman's Reagent检测其中巯基含量,得出抗原残留量,从而计算偶联效率。
4)关闭柱子的下端出口,加入等体积的封闭液,混匀,转移至合适的离心管中,于28℃震荡孵育30 min。
5)将上述反应体系取出,转移至重力柱中,流干其中的封闭液。
注:如果立即使用,可以参考【抗体纯化】操作。如果以后使用,可以用3倍柱体积的结合液清洗树脂,然后保存在等体积的保护液中,于 4℃冰箱保存。
1)将偶联了抗原的树脂装入合适的层析柱,用5倍柱体积的结合液进行平衡,使树脂处于与抗体更易结合环境中,一方面保护目标抗体,另一方面提高抗体结合效率。
2)将含有抗体的样品加到平衡好树脂中,为了保证抗体与树脂充分接触,提高目标抗体的回收率,可以控制上样流速在0.5-1 mL/min,并收集流出液。
3)用10-15倍柱体积的洗杂液进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,提高目的抗体的纯度,收集洗杂液。
4)使用5-10倍柱体积的洗脱液,收集洗脱组分,即目的抗体。
注:为了保持抗体活性,需要立即将洗脱组分透析至pH 7.0-8.0的缓冲液中,或者先加入1/10倍洗脱组分体积的中和液,将洗脱组分进行中和,再透析。
5)依次使用3倍柱体积的结合液和5倍柱体积的去离子水平衡树脂,最后再用5倍柱体积的保护液平衡,然后保存在等体积的保护液中,置于4℃保存,防止填料被细菌污染。
5. SDS-PAGE 检测
将纯化抗体样品得到的流出组分、洗杂组分和洗脱组分以及原始含抗体样品使用SDS-PAGE检测纯化效果。
注意事项
1.SulfoLink Coupling Agarose Resin使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。
2所有操作过程中,样本需要在4℃或冰上操作。
3.本产品仅作科研用途。
4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
附表 问题及解决方案
问题 |
原因分析 |
推荐解决方案 |
柱子流速低 |
筛板被堵塞 |
清洗或更换筛板 |
样品或树脂中有气泡 |
轻轻搅拌树脂或敲击层析柱去除气泡 |
|
偶联液中蛋白或多肽沉淀 |
蛋白或多肽不溶 |
偶联液中加入<30%的DMSO或DMF或6 M盐酸胍促进样品溶解 |
偶联效率低 |
样品无巯基,被氧化 |
加入DTT或TECP后立即交联 |
洗脱组分纯度低 |
树脂没有彻底清洗 |
增加结合/洗杂液体积 |
Ver.CN20241031