Plasmid Agarose HP 亲和层析介质是一种新型高度交联的亲硫芳香族琼脂糖层析介质,用于纯化超螺旋DNA,广泛应用于基因治疗和DNA 疫苗的开发应用。该层析介质具有高流速、低反压、非特异性吸附低、良好的亲水性、化学稳定性和机械性特点,方便进行规模放大,可缩短生产时间,提高生产效率。
产品性质
基质(Matrix) |
高度交联的琼脂糖凝胶 |
配基(Ligand) |
巯基吡啶 |
配基密度(Ligand density) |
27–50 µmol/mL |
粒径(Bead size) |
36-44 µm |
载量(Capacity) |
>3 mg/mL基质 |
耐压(Tolerance Pressuremax) |
0.3 MPa |
最大流速(Maximum velocity) |
220 cm/h |
PH稳定性(PH stability) |
3~13(长期),2~14(CIP,短期) |
化学稳定性(Chemical stability) |
在以下液体中稳定:所有常用的水相缓冲液;1mol/L 氢氧化钠;70% 乙醇;40%异丙醇;1M 醋酸 |
储存缓冲液(Buffer) |
20%乙醇,4~30℃ |
运输和保存方法
1.常温运输,避免日晒、雨淋、重压。
2.密封保存在 4~30℃(保存溶液为 20%乙醇)干燥、通风、清洁处,不可冷冻;用过的柱子保存在 4~8℃,20%乙醇溶液中。
3.有效期5年。
注意事项
1.柱的选择:从理论上说,只要柱足够长,就可以获得理想的分辨率,但由于层析柱流速同压力梯度有关,柱长增加使流速减慢,峰变宽,分辨率降低;柱的直径增加,使液体流动的不均匀性增加,分辨率明显下降。
2.纯化过程样品与层析介质必须彻底平衡后,才能进行柱层析。
3.所装的柱床必须表面平整,无沟流及气泡,否则应重装。
4.洗脱过程中应严格控制流速,且勿过快。
5.加样及整个洗脱过程中,严防柱面变干。
6.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
7.本产品仅作科研用途!
使用方法
1 装柱
装柱按照标准操作规程操作。必须保证每种材料都处于工作温度,凝胶装柱前需要脱气。
2 平衡
使用2~5倍柱床体积的上样平衡液平衡柱子,务必使流出液的电导和pH 同上样缓冲液的 电导和pH完全一致。平衡液是含高浓度硫酸铵的Tris缓冲溶液,推荐缓冲液:2 M(NH4)2SO4,10 mM EDTA,100 mM Tris-HCl,pH 7.5。
3 上样
1)样品用平衡液配制,浑浊的样品要离心和过滤后上样。
2)一般情况是让目标产品结合在柱子上,用平衡液洗去杂质,再选择一种洗脱液洗下目标产品。
4 洗脱
常用低浓度的硫酸铵溶液(1.7 M)加0.3 M氯化钠溶液洗脱。
推荐洗脱液:100 mM Tris-HCl,1.7 M(NH4)2SO4,10 mM EDTA, pH 7.5 + 0.3 M NaCl。
5在位清洗
1)对于以离子键结合上去的蛋白,可用0.5~1倍柱床体积的2 M NaCl去除。
2)对于沉淀蛋白、疏水性结合的蛋白或脂类,一般先用1 mol/L NaOH 洗脱5倍以上柱体积,然后用结合蛋白时的平衡液洗到平衡即可。
3)对强疏水性结合的蛋白、脂类等,用4~10倍柱床体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,需注意有机溶剂的浓度以梯度的方式逐渐增加,否则容易产生气泡。
6再生
一般可用 100 mM Tris, 10 mM EDTA 洗脱5倍以上柱体积,然后用结合蛋白时的平衡液洗到平衡即可。
HB220524