产品名称	产品编号	规格	价格（元）
Annexin V- YSFluorTM 647/7-AAD Apoptosis Detection Kit Annexin V- YSFluorTM 647/7-AAD 细胞凋亡检测试剂盒	40312ES20	20 T	518.00
	40312ES50	50 T	1120.00
	40312ES60	100 T	1960.00

 

产品简介

Annexin V-YSFluor^TM 647/7-AAD细胞凋亡检测试剂盒是用荧光染料YSFluor^TM 647（Phycoerythrin）标记的Annexin V作为探针，来检测细胞早期凋亡的发生，可用荧光显微镜、流式细胞仪或其他荧光检测设备进行检测。

其检测原理为：在正常的活细胞中，磷脂酰丝氨酸（phosphotidylserine，PS）位于细胞膜的内侧，但在早期凋亡的细胞中，PS 从细胞膜的内侧翻转到细胞膜的表面，暴露在细胞外环境中。Annexin-Ⅴ（膜联蛋白-V）是一种分子量为35-36KD的Ca²⁺ 依赖性磷脂结合蛋白，能与PS高亲和力结合。可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。

另外，本试剂盒中提供的7-AAD可用来区分存活的早期细胞和坏死或晚期凋亡细胞。7-AAD是一种核酸染料，同PI有着相似的荧光特性，但其发射光谱较PI窄，对其他检测通道的干扰更小，在多色荧光分析中是PI的最佳替代品，可与Annexin V联合使用。该染料不能透过正常细胞或早期凋亡细胞的完整的细胞膜，但可穿透晚期凋亡细胞或者坏死细胞并与其内的DNA结合。因此将Annexin V- YSFluor^TM 647与7-AAD联合使用时，7-AAD则被排除在活细胞（Annexin V-/7-AAD-）和早期凋亡细胞（Annexin V+/7-AAD-）之外，而晚期凋亡细胞和坏死细胞同时被Annexin V-YSFluor^TM 647和7-AAD结合染色呈现双阳性（Annexin V+/7-AAD+）。

 

产品信息

货号	40312ES20 / 40312ES50 / 40312ES60
规格	20T / 50 T / 100 T
光谱特性	YSFluorTM 647：Ex/Em=651/672 nm；7-AAD：Ex/Em=546/647nm
适用设备	流式细胞仪

 

组分信息

组分编码	组分名称	40312ES20 (20 T)	40312ES50 (50 T)	40312ES60 (100 T)
40312-A	重组人Annexin V-YSFluorTM 647, (rh Annexin V-YSFluorTM 647)*	100 µL	250 µL	500 µL
40312-B	7-AAD Viability Staining Solution（20µg/mL）	200 µL	500 µL	1 mL
40312-C	4×结合缓冲液 (4×Binding Buffer )	4 mL	10 mL	20 mL

*来源于大肠杆菌（E.coli），分子量为35.8 KDa，纯度＞98%（SDS-PAGE & HPLC）

 

储存条件

2~8℃储存，勿冰冻。Annexin V-YSFluor^TM 647、7-AAD需避光存储。有效期1年。

 

使用说明

1. 样品染色

1）悬浮细胞：300 g，4 ℃离心5 min收集细胞。

贴壁细胞：用不含EDTA的胰酶消化后，300g，4 ℃离心5 min收集细胞。胰酶消化时间不宜过长，以防引起假阳性。

2）配制1×Binding Buffer：用去离子水4倍稀释4×Binding Buffer（4 mL 结合缓冲液+12 mL 去离子水）。

3）用4 ℃预冷的PBS洗涤细胞2次，每次均需300 g，4 ℃离心5 min。

4）加入1×Binding Buffer重悬细胞，调节其浓度为1-5×10⁶细胞/mL。

5）取100 μL细胞悬液于5 mL流式管中，加入5 μL Annexin V-YSFluor^TM 647，轻轻混匀后于室温避光孵育5min。

6）加入10 μL 7-AAD（20µg/mL）。

7）加入400 μL PBS Buffer，混匀，样品在1小时内检测。

注意：为了避免洗涤细胞时损失细胞，在吸液时可以用大的Tip头套上小的Tip头吸液。

2. 观察检测

流式细胞仪

1）用流式细胞仪检测，Annexin V- YSFluor^TM 647的激发波长Ex=651nm，发射波长Em=672 nm；7-AAD的激发波长Ex=546 nm；发射波长Em=647 nm。用CellQuest等软件进行分析，绘制双色散点图（two-color dot plot），YSFluor^TM 647为横坐标，7-AAD为纵坐标。

2）荧光补偿调节：使用未经凋亡诱导处理的正常细胞，作为对照进行荧光补偿调节去除光谱重叠和设定十字门的位置。

荧光显微镜

1）滴一滴上述染色后的细胞悬液于载玻片上，并用盖玻片盖上细胞；

2）对于贴壁细胞来说，也可直接用盖玻片来培养细胞并诱导细胞凋亡；

a 将细胞于盖玻片上生长，用适当的凋亡诱导剂诱导细胞凋亡，并设立阴性对照组；

b 用PBS洗涤细胞两次；

c 在500 μL的Binding Buffer 中加入1 μL Annexin V-YSFluor^TM 647，5 μL 7-AAD染液混匀；

d 将上述溶液滴加于盖玻片表面，使长有细胞的盖玻片表面均匀覆盖；

e 室温避光孵育5 min。

3）将盖玻片倒置于载玻片上，在荧光显微镜下用双色滤光片观察。

 

注意事项

1. 试剂在开盖前请短暂离心，将盖内壁上的液体甩至管底，避免开盖时液体洒落。
2. 由于细胞凋亡是一个快速的过程，建议样品在染色后1小时之内进行分析。
3. 对于贴壁细胞，消化是一个关键步骤。贴壁细胞诱导细胞凋亡时如有漂浮细胞，需收集漂浮细胞和贴壁细胞后合并染色。处理贴壁细胞时要小心操作，尽量避免人为的损伤细胞。胰酶消化时间过短，细胞需要用力吹打才能脱落，容易造成细胞膜的损伤，7-AAD摄入过多；消化时间过长，细胞膜同样易造成损伤，甚至会影响细胞膜上磷脂酰丝氨酸与Annexin V-YSFluor^TM 647的结合。消化时将胰酶铺满孔板底后，轻摇时胰酶与细胞充分接触，然后倒掉大部分胰酶，利用剩余的少量胰酶再消化一段时间，待细胞间空隙增大，瓶底呈花斑状即可终止。在消化液中尽量不用EDTA，EDTA会影响Annexin V与PS的结合。
4. 如果样品来源于血液，请务必除去血液中的血小板。因为血小板含有PS，能与Annexin V结合，从而干扰实验结果。可以使用含有EDTA的缓冲剂并低速离心（200×g）洗去血小板，然后用Annexin V结合缓冲液清洗细胞，以避免残留的EDTA会螯合Ca²⁺。
5. 7-AAD为潜在致癌物，操作时请采取防护措施，穿防护服、戴手套等。
6. Annexin V-YSFluor^TM 647和7-AAD是光敏物质，在操作时请注意避光。
7. 本产品仅作科研用途！本产品仅作科研用途！

Ver.CN20240313