DNase I:RNA样本gDNA污染去除操作流程
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2026-05-29
RNA作为实验室常研究的样本,其质量的高低会直接影响实验数据的质量。一般在RNA提取过程中无法完全避免gDNA残留,因此,在进行对RNA纯度要求较高的实验之前,通常建议对RNA样本进行DNase I处理,消化残留的gDNA。消化gDNA步骤可以在RNA提取期间、RNA提取后或者RNA反转录之前进行。
需提前去除gDNA的实验一般包括:mRNA表达量分析、转录组分析、mNGS检测等。
图1. 基于DNase I的gDNA去除流程
本文基于权威文献《Removing DNA Contamination from RNA Samples by Treatment with RNase-Free DNase I》进行专业解读,结合翌圣生物 RNasefree DNase I 产品特性,为科研用户提供一套可直接落地、标准化的 gDNA 去除操作方案。
一、实验材料(翌圣产品匹配)
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试剂 |
翌圣货号 |
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RNasefree DNase I |
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10× DNase I 反应缓冲液 |
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25 mM EDTA |
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RNasefree H₂O |
无酶水 |
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RNA 样本 |
客户提取总 RNA |
二、标准实验步骤
1. 冰上解冻RNA 样本,避免高温引起 RNA 降解。
2. 按以下体系配制反应液(终体积 20 μL):
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组分 |
体积 |
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10× DNase I 反应缓冲液 |
2 μL |
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RNasefree DNase I |
1 U (每 1–2 μg RNA) |
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RNasefree H₂O |
To 20 μL |
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RNA 样本 |
客户提取总 RNA |
3. 混匀后短暂离心,37℃孵育 30 分钟,充分降解 gDNA。
4. 加入2.5 μL 25 mM EDTA,混匀。
5. 65–75℃加热 5–10 分钟,双重灭活 DNase I。
6. 短暂离心收集液体,冰上冷却,即可用于下游实验。
三、文献关键细节解读(实验避坑要点)
1. 样本量与酶用量原则
· 单反应体系推荐 RNA ≤10 μg,gDNA 污染水平≤10 μg/mL。
· 若 RNA>10 μg 或污染严重(>10 μg/mL),应稀释样本并按比例放大反应体系,保证酶量充足。
2. 灭活必须遵循:先加 EDTA,再加热
· EDTA 螯合二价金属离子,防止高温下 RNA 自发降解。
· 高温使 DNase I 彻底失活,避免干扰后续 PCR。
· 终浓度 EDTA 约 2.5 mM,不抑制逆转录酶等下游酶。
3. 其他去污染方法对比(文献补充)
· 酸性酚:氯仿抽提:DNA 进入有机相,RNA 保留在水相
· LiCl 沉淀:选择性沉淀 RNA,但重度 gDNA 污染时效果有限
结论:DNase I 酶解法通用性最强、操作最简单、稳定性最好
翌圣DNase I 选择指南
为满足不同的应用需求,翌圣可提供牛胰腺提取来源,E. coli重组表达、酵母重组表达来源的DNase I,并可提供GMP级别DNase I,以满足mRNA体外转录等应用。
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Description |
Catalog No. |
Application |
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提取自牛胰腺,经色谱工艺制备,核糖核酸酶A(RNase A)活性含量极低。为冻干粉剂。 |
1、从样本中提取RNA时去除gDNA。(如果是微量样本,需要用重组来源的DNase I)。 2、蛋白质研究: 从蛋白制备物中去除DNA。 |
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提取自牛胰腺,经色谱工艺制备,核糖核酸酶A(RNase A)活性含量极低(≤0.0005%)。为冻干粉剂。 |
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大肠杆菌重组表达DNase I (RNase-free),大肠杆菌重组表达,不含RNase,液体形式。 |
适用于各种应用:RNA提取过程中的基因组DNA去除、反转录前的基因组DNA清除、体外转录后模板DNA的消化、RNA建库过程中rRNA去除、缺口平移法进行DNA标记、DNase I足迹法分析实验、需要避免动物源成分的应用场景等。 |
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毕赤酵母重组表达DNase I (RNase-free),不含RNase,液体形式。 |
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大肠杆菌重组表达DNase I (RNase-free),GMP-grade,液体形式。 |
GMP药用级别。用于采用药用规格原辅料生产,符合GMP规范的产品生产与质量管理规程保障生产过程及所有原辅料可追溯。 |
参考文献
1、Green M R, Sambrook J. Removing DNA contamination from RNA samples by treatment with RNase-free DNase I[J]. Cold Spring Harbor Protocols, 2019, 2019(10): pdb. prot101725.





