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Aureobasidin A (AbA) 金担子素A-酵母单/双杂交研究的筛选标记

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
什么是金担子素A
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 


金担子素A (Aureobasidin A,AbA)是从丝状真菌Aureobasidium pullulans No. R106中分离出来的环酯肽类抗生素,具有很强的抗真菌能力,在较低的浓度下(0.1-0.5 μg/mL)即可对酵母产生毒性。AbA作用机制是通过抑制酵母中AUR1基因编码的肌醇磷酰胺合成酶(inositol phosphorylceramide synthase, IPC synthase)的活性,阻碍神经酰胺到肌醇磷酰胺的合成,导致鞘脂类物质不足,细胞膜破裂,从而杀死菌株。对AbA敏感的的真菌种类包括:出牙酵母(Saccharomyces cerevisiae)、粟酒裂殖酵母(Schizosaccharomyces pombe)、光滑念珠菌(Candida glabrata)、构巢曲霉(Aspergillus nidulans)和黑曲霉(A. niger.)。

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图1 AbA结构式,CAS#127785-64-2
 

研究发现,酿酒酵母的AUR1基因与构巢曲霉的AURA基因具有同源性,都能编码IPC合成酶,因此,对这两个基因进行突变,能够赋予菌株很强的AbA抗性,比如:突变基因AUR1-C。AbA非常适合作为筛选阳性克隆的药物选择性标记,使用上也不需要优化条件,且背景极低。AbA抗性也是酵母单/双杂交研究中理想的报告子,兼容于携带相应抗性的酵母杂交系统。

 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
什么是酵母单/双杂交系统
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 


酵母双杂交系统(Yeast two-hybrid assay)是由Fields和 Song等人根据真核转录调控的特点创建的,能够快速、直接分析已知蛋白之间的相互作用,在研究抗原和抗体相互作用、发现新蛋白质和蛋白质的新功能、筛选药物作用靶点、建立基因组蛋白连锁图等方面应用广泛。酵母双杂交原理是:真核生物的转录激活因子含有两个不同的结构域:DNA结合结构域(DNA binding domain,DNA-BD)和DNA转录激活结构域(Activation domain,AD),这两个结构域可以独立分开,功能互不影响。BD和AD分别单独作用并不能激活转录反应,只有当二者在空间上充分接近时,才呈现完整的转录激活因子活性,使下游基因得到转录。将两待研究蛋白(蛋白X与蛋白Y)分别与BD 、AD结构域构建融合质粒,转入同一酵母细胞中表达,如果两蛋白之间不存在相互作用,则报告基因不会转录表达;如果两个蛋白存在相互作用,则BD与AD两结构域空间上很接近,从而报告基因得到转录。

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2 酵母双杂交原理图[1]

 

酵母单杂交技术是在酵母双杂基础上发展而来的一种研究核酸-蛋白相互作用的工具,被广泛用于研究真核细胞内基因的表达调控,如鉴定已知DNA和已知蛋白质之间是否存在相互作用;分离结合于目的顺式调控元件或其他短DNA结合位点的新蛋白质;准确定位已经证实的具有相互作用的DNA结合位点和对蛋白质的DNA结合结构域进行分析。它的基本原理是将已知顺式作用元件构建到最基本启动子(minimal promoter,Pmin)的上游,把报告基因连接到Pmin下游。将编码待测转录因子cDNA与酵母AD结构域融合表达载体导入酵母细胞,该基因产物如果能够与顺式作用元件相结合,就能激活 Pmin启动子,使报告基因得到表达。

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图3 酵母单杂交原理图[2]

 

针对酵母单/双杂交研究,翌圣生物推出产品60231ES Aureobasidin A (AbA) 金担子素A,是溶于甲醇的AbA溶液,纯度 ≥ 97%,浓度为1 mg/mL。翌圣推荐在酵母单/双杂交实验中AbA抑制浓度为:100-1000 ng/mL,具体的工作浓度取决于宿主细胞的敏感度(见表1. AbA对各种酵母菌的最低抑菌浓度(MIC))。

表1 Aureobasidin A对各种酵母菌的最低抑菌浓度

菌株

MIC (ng/mL)

S.cerevisiae

ATCC9763 (diploid)

200-400

SH3328 (haploid)

100

Sake yeast (diploid)

100-200

Shochu yeast (diploid)

100

Beer yeast (triploid or tetraploid)

100

Baker’s yeast (diploid)

200-400

Schizo.pombe

JY-745 (monoploid)

100

C.albicans

TIMM-0136 (diploid)

40

C.tropicalis

TIMM-0324 (diploid)

80

 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
应用案例
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

为研究GmWRKY31蛋白在GmSAGT1基因启动子上的结合位点,在酵母单杂实验中,将目的DNA序列插入到含有尿嘧啶报告基因Ura3的pBait-AbAi载体中,位于基因AUR1-C的上游,酵母转化相应质粒后悬浮在0.9% NaCl溶液中,OD600调整为0.005。随后,将100 μL样品涂于含500 ng/mL AbA的平板上,倒置,30℃下培养3-5天[3]

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参考文献

[1] Paiano A, et al. Yeast Two-Hybrid Assay to Identify Interacting Proteins.Curr Protoc Protein Sci. 2019 Feb;95(1):e70.

[2] John S, et al. Yeast one-hybrid assays: a historical and technical perspective.Methods. 2012 August;57(4): 441-447.

[3] Dong H, et al. Transcriptome analysis of soybean WRKY TFs in response to Peronospora manshurica infection. Genomics. 2019 Dec;111(6):1412-1422.

 

400-6111-883