产品简介
动物组织直接PCR试剂盒是一款可直接对不同动物组织进行PCR扩增的试剂盒,适应性广、稳定性强、操作简易。本试剂盒采用独特的裂解缓冲液体系,可以快速的裂解多种动物组织样品并释放出基因组DNA,如昆虫足翅、鼠尾、鼠趾、动物皮肤和内脏等。裂解产物可以用于DNA提取纯化、也可以直接用于PCR反应、也可以在-20℃或以下温度条件下长期保存备用。
本试剂盒中提供的2×Tissue Direct PCR Mix (With Dye)具有很强的扩增兼容性,不需要额外采用纯化提取试剂去除裂解产物中的各种残骸杂质,能直接以待测样品裂解液为模板,进行高效特异性扩增。该试剂为2倍浓缩PCR反应混合液,包含了用于PCR扩增除模板和引物外的所有组分,大大简化扩增步骤的操作过程,降低污染机率。
该试剂盒可用于动物基因扩增检测、转基因动物基因型鉴定等。
组分编号 |
组分名称 |
10184ES50 |
10184ES70 |
储存条件 |
10184-A |
Lysis Buffer |
10 mL |
4×10 mL |
2-8℃ |
10184-B |
Proteases |
100 μL |
400 μL |
-25~-15℃ |
10184-C |
2×Tissue Direct PCR Mix (With Dye) |
500 μL |
1×2 mL |
-25~-15℃ |
10184-D |
5×PCR Enhancer |
200 μL |
800 μL |
-25~-15℃ |
a)Lysis Buffer和 Proteases两种组分配合使用于动物组织裂解。
b)2×Tissue Direct PCR Mix (With Dye)包含PCR扩增所需要的热启动Taq DNA聚合酶、dNTP和Mg2+等;已混有溴酚蓝染料作为电泳指示剂,PCR产物可以直接进行电泳。
c)5×PCR Enhancer:高GC含量扩增(如大于65%)时,建议使用5×PCR Enhancer。
储存条件
1. 试剂10184-A【Lysis Buffer】为动物组织裂解缓冲液,建议保存于2-8℃。
2. 试剂10184-B【Proteases】为动物组织裂解剂,使用时请勿长久开盖,建议保存于-25~-15℃,避免反复冻融。
3. 试剂10184-C【2×Tissue Direct PCR Mix (With Dye)】,建议保存于-25~-15℃,避免反复冻融。
4. 试剂10184-D【5×PCR Enhancer】,建议保存于-25~-15℃,避免反复冻融。
试剂盒有效期1年。
使用说明
【注】
a)Lysis Buffer与Proteases混合后尽快使用,不宜长期保存;大量样本操作时,可以将Lysis Buffer与Proteases按100 μL:1 μL的比例混匀备用。
b)组织应取少量并尽量剪碎,以便裂解反应更顺利进行。各组织推荐使用量:鼠尾:长度2-4 mm;鼠趾:1-4个;鼠脏器、脑:直径2-4 mm;斑马鱼、线虫、果蝇等昆虫组织:1-4个;细胞数量:105-108个。斑马鱼、线虫、果蝇等较小样本的组织,可适当减少Lysis Buffer至50-100 μL。昆虫等外壳坚硬的样本,建议剪碎样本并增加Proteases至4 μL。
c)55℃孵育,一般5 min即可满足多数PCR需求,如鼠尾、鼠耳等组织;若需要的DNA量较大或样品较难裂解,可将时间延长至30 min或更久;裂解时间可在5-30 min之间调整,组织块不需完全裂解,残余的部分在后续离心步骤中可被除去。
组分 |
体积(μL) |
终浓度 |
2×Tissue Direct PCR Mix(With Dye) |
10 |
1× |
Forward Primer(10 μM) |
0.5 |
0.25 μM |
Reverse Primer(10 μM) |
0.5 |
0.25 μM |
裂解产物(DNA模板) |
2 |
- |
无菌超纯水 |
To 20 |
- |
表1 PCR反应体系
【注】:各组分使用前应充分混匀。
a)模板使用量:建议总体系的5-20%之间,避免超过总体系的20%。
b)引物终浓度:反应性能较差时,推荐在0.1- 0.5 μM范围内调整引物浓度。
c)反应体系:推荐使用20 μL,以保证目的基因扩增的有效性和重复性。
d)体系配制:配制好PCR反应体系,置于涡旋仪上涡旋混匀,瞬时离心将反应液集于管底。
e)对照反应:建议进行PCR时,设置阳性和阴性PCR对照反应以便于排除假阳性或假阴性的干扰。
循环步骤 |
温度 |
时间 |
循环数 |
预变性 |
94℃ |
5 min |
1 |
变性 |
94℃ |
10 sec |
35 |
退火* |
60℃ |
20 sec |
|
延伸** |
72℃ |
20 sec |
|
终延伸 |
72℃ |
5 min |
1 |
表2 PCR反应程序
*退火温度:请参考引物的理论Tm值,退火温度可设置低于引物理论值5℃,或通过梯度PCR确定最佳温度。
注意事项
常见问题与解决方法
常见问题 |
可能原因 |
解决方法 |
阳性对照、待测样本均无条带。 |
PCR反应体系或反应条件不合适。 |
使用梯度PCR摸索PCR最佳反应条件。 |
PCR试剂保存不当失去活性。 |
2×PCR Mix应保存于-25~-15℃,使用时避免反复冻融。若使用频繁,可在2-8℃短时间存放。 |
|
引物设计问题。 |
尝试重新设计引物进行检查。 |
|
阳性对照有目的条带,待测样本无条带或条带弱。 |
不当储存或长期储存引起试剂活性丧失。 |
使用新鲜的试剂。 |
加入组织裂解液过量。 |
增大反应体系,或减少裂解液的用量。 |
|
样本裂解混合液保存不当或保存时间过久,DNA基因组已经降解。 |
裂解混合液可在2-8℃保存2-3天,尽量使用新制备的裂解液混合液进行PCR。 |
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模板加入量不适合。 |
在反应体系5-20%范围内优化模板加入量。 |
|
PCR循环数不足。 |
适当增加PCR的循环数,推荐在35-40循环为佳。因为模板复杂,一般PCR反应要比用纯化的 DNA模板多5-10个循环为佳。 |
|
非特异性扩增 |
PCR退火温度太低,循环数、引物浓度或模板浓度太高。 |
提高PCR退火温度,降低PCR循环数、引物浓度或模板浓度。 |
PCR引物错配。 |
重新设计PCR引物。 |
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配制PCR反应体系时温度太高或配制完成后放置时间太久。 |
PCR反应体系的配制在低温下进行,配制完成后尽快进行PCR扩增反应。 |
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阴性对照出现目的条带 |
操作工具或试剂污染。 |
实验所有试剂或器材均应高压灭菌。操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。 |
样本间交叉污染。 |
每个取样器只对一个样本使用;或取完一个样本后,将取样器刃口浸入2%的次氯酸钠溶液中,反复涮洗,然后用干净的纸巾擦干残液。 |
Ver.CN20241029