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人肠类器官培养手册

研究背景

肠道是人体重要的消化器官,肠指的是从胃幽门至肛门的消化管, 是消化器官中最长管道,人体肠道结构主要包括小肠和大肠。肠道疾病非常常见,如肠梗阻、慢性炎症性肠病、结直肠癌等等,其中结直肠癌已成为威胁人类健康最严重的疾病之一。因此,肠道的研究是现在非常热门的领域,有着广阔的应用前景。

 

培养方案
 
 
 
文献分析一

2009年,Hans Clevers研究团队利用来源于肠隐窝的单个干细胞(Lgr5+)或单个隐窝结构,首次在体外成功培养出3D肠道“类器官”。离体的肠道干细胞或隐窝在基质胶、小分子化合物、细胞添加剂以及多种生长因子中培养可不断增殖,具有自我更新及分化能力,能够分化形成多种肠道成熟细胞,在肠道疾病模型建立和研究中发挥重要的作用。[1]

图1. 单细胞在单孔中的集落形成效率[1]

 

1. 隐窝分离,细胞分离和细胞培养

通常在含有2 mM EDTA的PBS中,4℃下孵育30 min,从小鼠小肠中释放隐窝。对分离的隐窝进行计数并成球。在24孔板中,加入基质胶、生长因子(10-50 ng/mL EGF、500 ng/mL R-spondin 1、100 ng/mL Noggin)孵育。

 

2. 分选实验

分离的隐窝37℃孵育45 min,分离后的细胞通过孔径为20 μm的细胞过滤器。将分选的细胞收集在隐窝培养基中,并加入含有Jagged-1多肽(1 μM)的基质胶中,每孔1个细胞(在96孔板中,含5 mL基质胶)。

 

3. 隐窝培养基

48孔板加入250 μL培养基,96孔板100 μL培养基,并且添加小分子化合物Y-27632(10 μM),每隔一天添加一次生长因子,每4天更换一次培养基。

 

4. 传代

将类器官从基质胶中取出,机械分离成单隐窝结构域,然后转移到新鲜的基质胶中。每1-2周进行一次,分割比例为1:5。[1]

 图2. 肠隐窝培养系统的建立[1]

 图3. b、c、d分别为培养第5天、14天、3周后的情况,e为隐窝样器官的示意图[1]

 

在培养小鼠结肠类器官时,培养基中需要添加p38 MAPK激酶抑制剂(SB-202190)、TGF-β抑制剂(A 83-01)、Rho激酶抑制剂(Y-27632)和GSK抑制剂(CHIR-99021)、Jagged-1等小分子化合物,以及EGFR-spondin-1NogginWnt-3A等生长因子。[1] [2] 

 

研究团队根据肠上皮细胞的生长需求来设计的这样一个培养系统,Wnt信号传递是隐窝增殖的关键要求,而Wnt激动剂R-spondin1在体内诱导隐窝明显增生,表皮生长因子(EGF)的信号转导与肠道增殖有关,Noggin的转基因表达诱导了隐窝数量的增加。Rho激酶抑制剂Y-27632抑制胚胎干细胞失巢凋亡,降低细胞死亡率。细胞间的Notch信号对于维持隐窝的增殖至关重要,我们还提供了一种Notch激动性肽(Jagged-1)。[1] [2]

 

 
 
 
文献分析二

2022年Hans Clevers团队创新性地引入了IL-22来优化hSIOs培养基组成,极大地提高了肠道类器官的出芽比例,上调潘氏细胞的表达水平,更好地模拟人体内肠道的组成性表达成分。如下图。

 

图4.人结肠培养(小分子化合物Nicotinamide、SB 202190和A 83-01对培养的影响)[2]

 

 图5.人结肠腺癌细胞的培养过程[2]

 
 
 
文献分析三

类器官培养和药物刺激的hSIO培养基中需要添加的小分子化合物、添加剂和细胞因子,分别为:B-27(1%),N-乙酰半胱氨酸(1 mM),烟酰胺(10 mM),Alk 4/5/7抑制剂A 83-01(500 nM), p38抑制剂SB 202190(3-10 μM),前列腺素E2(10 nM),CHIR-99021(3-10 μM),Rho激酶抑制剂Y-27632二盐酸盐(10 μM)和Primocin(100 μg/mL),BP-1-102LY294002MK-2206雷帕霉素N-2谷氨酰胺HEPES青霉素/链霉素R-SpondinNoggin(2%),人EGF(50 ng/mL),人IL-22(2 ng/mL),具体如下图所示(图六)。[3]

 

化合物名称

货号

A 83-01

53002ES

SB 202190

53005ES

CHIR-99021

53003ES

Y-27632 dihydrochloride

52604ES

Gastrin I (human)

53007ES

N-Acetyl-L-cysteine

50303ES

Nicotinamide烟酰胺

51402ES

BP-1-102

53174ES

LY294002

52403ES

MK-2206 2HCl

53008ES

Rapamycin雷帕霉素

52404ES

Prostaglandin(PG) E2 前列腺素E2

60810ES

Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL)

60162ES

HEPES (1 M)

60117ES

L-alanyl-L-glutamine solution,200mM L-丙氨酰-L-谷氨酰胺,200mM

60701ES

Primocin

60281ES

B27 Supplement (50X)

60703-60705ES

N-2 supplement,serum free,100X N-2无血清添加剂,100X

60706ES

Recombinant Human IL-22

90121ES

Recombinant Murine IL-22

90155ES

Recombinant Human Wnt -3a protein

92276ES

Recombinant Human Noggin Protein

92528ES

Recombinant Human EGF

92701ES

Ceturegel® Matrix for Organoid culture,Phenol Red-Free,LDEV-Free 基质胶

40191ES08/10

 

培养步骤
 
 
 
人肠类器官的培养

1.重悬隐窝基质胶混合物,孔板中加入一定量的混合物和隐窝培养基(如24孔板可加入50 μL混合物和500 μL培养基);
2.用离心管转移到超净工作台里,PBS(含双抗)润洗2-3次,将肠粘膜转移至含有EDTA(2 mM)的溶液中,置于4℃,小肠消化约30 min,结肠消化约1 h;
3.将消化好的小肠粘膜转移至离心管中,加入PBS,摇晃均匀后用70 μm的细胞过滤筛过滤,1000 r/min室温离心5 min,结肠隐窝无需过滤;
4.弃上清,加入培养基重悬沉淀,计数,隐窝的数量约10个/μL为佳;
5.加入一定量的悬液到离心管中,室温离心5 min;
6.加入预冷的基质胶混合物(基质胶:培养基为2:1)重悬沉淀;
7.将重悬液按一定量接种在预热的孔板中;

8.每个孔加入一定量的预热的隐窝培养基,37℃培养1-2周。

 

 
 
 
人肠类器官的传代

9.在培养板中,每孔加入一定量的培养基,用枪头将基质胶小心的刮出,取悬液,转移到离心管中;
10.将要传代的隐窝置于冰上5-10 min;
11.用枪头吹打基质胶,反复进行,直至基质胶被打碎,中间尽量避免气泡产生;

12.将消化好的小肠粘膜转移至离心管中,加入PBS,摇晃均匀后用70 μm的细胞过滤筛过滤,1000 r/min室温离心5 min,结肠隐窝无需过滤;

13.弃上清,加入培养基重悬沉淀,计数,隐窝的数量约10个/μL为佳;

14.加入一定量的悬液到离心管中,室温离心5 min;

15.加入预冷的基质胶混合物(基质胶:培养基为2:1)重悬沉淀;

16.可按1:1 - 3:1进行传代培养;

 

 
 
 
人肠类器官的冻存

17.将需要冻存的类器官置于冰上5-10 min;
18.收集类器官,离心后弃上清;
19.加入冻存培养液重悬类器官,分装至冻存管中,置于-80℃,24 h后置于液氮中长期保存。

 

利用肠类器官构建的体外肠道模型,可以极大的推动对肠道疾病发生发展的研究,为高通量药物筛选、新物研发、药物功能检测、靶向治疗、个性化精准医疗、再生医学提供新的重要的研究平台和途径。肠道类器官的出现,为肠道疾病的研究和治疗打开了一扇全新的大门。

 

参考文献

[1] Sato T, et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 2009 May 14;459(7244):262-5. doi: 10.1038/nature07935. Epub 2009 Mar 29. PMID: 19329995.

[2] Sato T, et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett's epithelium. Gastroenterology. 2011 Nov;141(5):1762-72. doi: 10.1053/j.gastro.2011.07.050. Epub 2011 Sep 2. PMID: 21889923.

[3] He GW, et al. Optimized human intestinal organoid model reveals interleukin-22-dependency of paneth cell formation. Cell Stem Cell. 2022 Sep 1;29(9):1333-1345.e6. doi: 10.1016/j.stem.2022.08.002. Epub 2022 Aug 23. Erratum in: Cell Stem Cell. 2022 Dec 1;29(12):1718-1720. PMID: 36002022; PMCID: PMC9438971.

 

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