超滤离心管是生物实验室中实现大分子分离、浓缩与脱盐的核心耗材。其工作原理基于半透膜的选择性筛分：在离心力驱动下，盐类、缓冲液及小分子代谢物透过滤膜进入外管，而蛋白质、核酸、病毒颗粒等大分子则被截留于膜上，实现快速浓缩与纯化。该工具已广泛应用于蛋白纯化、抗体浓缩、病毒收集及核酸脱盐等实验流程，成为生命科学研究与生物制药领域的标准化选择。

然而，传统超滤管常面临浓缩过度导致样品干膜、回收率波动大等困扰。翌圣生物ConvFac®系列超滤离心管通过物理止滤点与膜面积优化，系统性解决这些实验痛点。

图1 ConvFac® 超滤离心管示意图（15 mL）

改良聚醚砜膜（Modified PES）

采用改良聚醚砜材质超滤膜，兼具优异亲水性、快速超滤、高浓缩倍数及高样品回收率等核心优势，可高效适配各类生物样品的处理需求。

物理止滤点设计

内置物理止滤点——当样品浓缩至设定体积时自动阻断过滤，彻底杜绝"干膜"风险，即使离心机定时误差也不损失珍贵样品。

大有效膜面积

配合大倾斜角结构与优化导流槽，有效膜面积显著提升。ConvFac® 4 mL超滤离心管有效膜面积达3.4 cm²，ConvFac® 15 mL超滤离心管达9.5 cm²，在加快样品处理效率的同时，进一步保障截留物回收率稳定高于90%。

图2  ConvFac®超滤离心管滤液体积与离心时间的关系

(左图：4 mL 超滤管,起始体积3 mL; 右图：15 mL超滤管，起始体积10 mL)

图3  翌圣ConvFac®系列与市场主流品牌超滤管收率对比图

ConvFac®系列超滤离心管涵盖6种不同截留分子量（MWCO），适用于各类分子量的蛋白、核酸及其他小分子样本的超滤浓缩处理。

Q1：怎么选择合适截留分子量（MWCO）的超滤管？

A：核心原则：超滤管MWCO≤目的蛋白分子量的1/3。例：35kDa蛋白选10kDa超滤管，10kDa蛋白选3kDa超滤管，确保目的蛋白不穿透流失。

Q2：超滤管体积规格怎么选？

A：根据样品初始体积和目标浓缩倍数选择，不超管体最大容量，也避免样品过少导致浓缩效率过低，适配蛋白浓缩、缓冲液置换、样品脱盐等实验即可。

Q3：两种蛋白想用超滤管分离，分子量需要差多少？

A：两种蛋白分子量需相差10倍及以上，差值太小会交叉截留，无法实现有效分离。

Q4：超滤离心管是一次性的吗？能不能重复使用？

A：翌圣ConvFac®系列超滤离心管为一次性实验耗材，建议单样品单次使用。若需多次使用,建议对同一样本进行多次浓缩实验。不同样品、不同体系严禁交叉复用。

u若需对多个样品进行浓缩且需去除残留物，建议使用 0.1M NaOH 溶液浸泡润洗 20 分钟(切勿超过 30 分钟)，随后以超纯水或缓冲液润洗后使用;

u若超滤管使用后暂不进行再次浓缩操作，建议浸泡润洗后注满超纯水或缓冲液，并将其倒置存放于 4°C冰箱中,以防止膜干燥及冻结。

u为保障重复使用的安全性,除严格按照本细则进行润洗、保存等操作外,还需特别留意枪头不可划伤膜面,即便是轻微划痕也可能对本结构的安全性造成影响。

Q5：超滤管可以高压灭菌吗？正确怎么消毒？

A：翌圣ConvFac®系列超滤离心管均为非灭菌产品，严禁使用高温高压、紫外辐照、酒精浸泡等灭菌方法。

Q6：超滤管使用前应如何处理？

A：翌圣ConvFac®系列超滤离心管的PES膜中均含有保孔剂（甘油），为避免对后续检测造成干扰，建议在使用前用纯化或缓冲液进行润洗，润洗可最大化超滤管的浓缩速度。

Q7：蛋白浓缩过程中出现沉淀怎么办？

A：降低离心转速、减缓浓缩速度；不要过度浓缩提高蛋白终浓度；换稍大MWCO超滤管；每次离心后轻柔吹打样品，打散蛋白聚集后再继续浓缩。

Q8：蛋白容易吸附在超滤膜上，损耗大怎么改善？

A：超滤管上机前做专项预处理，用适配缓冲液饱和膜体吸附位点，降低特殊蛋白与聚醚砜膜的非特异性吸附，减少蛋白损失。

Q9：浓缩完之后，浓缩液里检测不到目的蛋白是什么原因？

A：①蛋白起始浓度太低，膜无法有效截留；②MWCO选型过大、孔径不匹配；③离心转速不合适，截留失效或蛋白变性；④浓缩过程中蛋白已沉淀，按沉淀优化方案调整实验条件。