干货 | 蛋白表达第一弹-质粒提取
重组蛋白定义
利用重组DNA或RNA获得目的蛋自的技术,其原理是将外源基因与载体连接成重组载体,然后转入到宿主菌从而表达目的蛋白。
蛋白表达核心流程概览
基因克隆 → 载体构建 → 转化/转染 → 诱导表达 → 蛋白提取 → 纯化 → 鉴定
蛋白表达详细步骤
目的:将目标基因插入表达载体,获得重组质粒。
操作:
1)设计引物(含酶切位点或同源臂)
2)PCR扩增目的基因
3)双酶切或同源重组连接载体
4)转化大肠杆菌DH5α,涂板筛选
5)菌落PCR、酶切鉴定、测序验证
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体系 |
方法 |
要点 |
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原核(大肠杆菌) |
热激法转化 |
将重组质粒转入BL21(DE3)等表达菌株 |
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真核(哺乳动物) |
脂质体转染/电转 |
293T、CHO等细胞,需优化转染效率 |
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酵母/昆虫细胞 |
电转或化学转化 |
特定宿主如毕赤酵母、Sf9细胞 |
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植物 |
农杆菌介导、基因枪、病毒递送(TRV/TMV) |
筛选标记包括抗生素抗性、除草剂抗性、荧光标记 |
原核表达(IPTG诱导)
1)小试优化:设置IPTG浓度梯度(0.1-1 mM)、温度梯度(16-37℃)、时间梯度(2-16 h)
2)SDS-PAGE检测:确定最佳表达条件
真核表达
1)瞬时转染:质粒在细胞中暂时表达,48-72 h后收蛋白
2)稳定细胞系筛选:加抗生素(G418/嘌呤霉素)筛选2-4周
3)诱导型启动子:如Tet-On系统需添加诱导剂
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方法 |
适用场景 |
裂解液配方 |
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超声破碎 |
大肠杆菌(胞内蛋白) |
50 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 1% Triton X-100, 1 mM PMSF |
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匀浆法 |
哺乳动物细胞 |
含蛋白酶抑制剂、磷酸酶抑制剂 |
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酶解法 |
酵母细胞壁 |
溶菌酶+蜗牛酶处理 |
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化学渗透 |
周质空间蛋白 |
渗透压冲击法 |
⚠️ 关键 :全程4℃操作,充分添加蛋白酶抑制剂(PMSF、Cocktail)
蛋白纯化基于分子间相似性与差异,主要采用层析、沉淀及过滤技术。
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纯化方法 |
具体技术 |
分离原理 |
特点与优势 |
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层析法 |
离子交换层析 |
电荷差异(等电点) |
载量高、分辨率高,适用于捕获初纯 |
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疏水作用层析 |
疏水性差异 |
在高盐环境下结合,有效去除杂蛋白 |
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亲和层析 |
特异性标签/配体捕获 |
选择性最强,一步纯化可达95%以上纯度 |
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凝胶过滤层析 |
分子大小(排阻效应) |
分子筛分,精纯化并去除痕量杂质 |
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沉淀法 |
盐析/有机溶剂沉淀 |
溶解度变化 |
成本低、处理量大,适合粗提和浓缩 |
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膜分离技术 |
超滤/透析 |
分子量截留(孔径筛分) |
浓缩样品、置换缓冲液,保护蛋白活性 |
策略建议:根据目的蛋白的稳定性、标签类型及理化性质,优先选择亲和层析快速捕获,再辅以离子交换或凝胶过滤精纯,沉淀法常用于初始浓缩。
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检测方法 |
优点 |
缺点 |
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紫外吸收法(A280) |
快速无损(<1分钟)、无需试剂、样品可回收、操作简便 |
易受核酸/缓冲液干扰、灵敏度低(需≥0.1 mg/mL)、无酪氨酸/色氨酸时不适用 |
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Bradford法 |
快速(5分钟)、灵敏(μg级)、颜色稳定、兼容还原剂 |
蛋白间差异大、受去垢剂(SDS、Triton)抑制、标准曲线非线性 |
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BCA法 |
灵敏稳定、线性范围广、耐受大部分去垢剂、兼容性强 |
耗时(需30-60分钟孵育)、受还原剂(DTT、β-ME)干扰、需精确控温 |
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Lowry法 |
灵敏度较高(较Bradford略高) |
操作繁琐、试剂不稳定、易受多种物质干扰、重现性差、已较少使用 |
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荧光法 |
灵敏度极高(ng级)、样品用量少、动态范围宽、特异性强 |
需荧光检测仪、试剂成本高、易受背景荧光干扰、需优化染料浓度 |
选择建议:纯化蛋白首选A280快速检测;粗提液或含去垢剂样品推荐BCA法;高通量筛选用Bradford法;微量样品选荧光法。
常见问题与解决方案
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问题 |
原因 |
解决方案 |
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无表达 |
密码子偏好性、启动子问题 |
更换表达菌株(Rosetta)、优化诱导条件 |
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包涵体 |
蛋白折叠错误 |
降低诱导温度(16℃)、添加分子伴侣 |
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降解 |
蛋白酶降解 |
添加蛋白酶抑制剂、快速操作 |
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内毒素高 |
革兰氏阴性菌裂解 |
使用去内毒素试剂盒、更换真核系统 |
质粒:蛋白表达的"总设计师"
质粒作为携带目的基因的表达载体,其设计直接决定了蛋白表达的成败。强启动子(如T7/lac)驱动转录效率、抗性基因保障筛选稳定性、亲和标签(His/GST)简化后续纯化、密码子优化提升翻译水平——这些元件的精密组合,构成了蛋白表达的"蓝图"。一个优质的质粒,既要具备高拷贝数以获得基因剂量优势,又要保证复制稳定性避免宿主负担过重。
质粒提取:被低估的"第一战役"
质粒提取绝非简单的"提DNA"操作,而是整个蛋白表达流程中承上启下的关键环节。提取产物的质量直接决定了下游实验的成败:纯度不足(残留内毒素、RNA或基因组DNA)会抑制宿主细胞生长甚至导致表达沉默;浓度不够则影响转染效率;而质粒降解更是断送了所有后续努力。许多研究者遭遇的"转化失败""表达量低""蛋白无活性"等问题,根源往往回溯到这第一步操作。可以说,质粒提取的质量,为整个蛋白表达项目定下了基调。
翌圣生物:从源头护航蛋白表达
针对这一关键环节,翌圣生物提供从质粒提取到蛋白表达的全流程优化方案。其质粒小提/中提/大提系列试剂盒采用改良的裂解-中和-纯化技术,内毒素残留低于0.1 EU/μg,A260/A280比值稳定在1.8-2.0之间,确保质粒的高纯度与完整性。我们拥有蛋白制备研究的整体解决方案,包括载体构建、蛋白表达、蛋白纯化、蛋白分析,为您的研究保驾护航。
柱式质粒提取选择指南
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产品名称 |
产品货号 |
产品特点 |
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质粒小量提取 |
19001ES |
菌液兼容量1-5 mL;得率高、纯度好 |
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无内毒素质粒小量提取 |
19021ES |
菌液兼容量1-5 mL,内毒素≤1 EU/μg; |
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无内毒素质粒小中量快速提取 |
19022ES |
菌液兼容量5-15 mL,内毒素≤1 EU/μg; |
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无内毒素质粒中量快速提取 |
19023ES |
菌液兼容量30-70 mL,内毒素≤1 EU/μg; |
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无内毒素质粒大量提取 |
19037ES |
菌液兼容量200 mL,内毒素≤1 EU/μg; |
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超纯无内毒素质粒大量提取 |
19038ES |
菌液兼容量200 mL,内毒素≤0.01EU/μg; |


