CAR-T(Chimeric antigen receptor T cell)疗法:是指通过基因改造技术,使患者 T 淋巴细胞表达嵌合抗原受体,进而能特异性识别、结合肿瘤相关抗原靶点,并同时激活 T 淋巴细胞使其大量增殖活化,从而达到有效杀伤肿瘤细胞的效果,还可形成免疫记忆T细胞,从而获得特异性的抗肿瘤长效机制。
CAR的结构包括胞外区、铰链区、跨膜区和胞内信号肽区。胞外区主要是抗原特异性单克隆抗体单链可变区序列,包括重链可变区和轻链可变区,二者以铰链连接。其主要作用是以非MHC(Major histocompatibility complex,主要组织相容性复合体)限制性的方式特异性识别靶细胞/肿瘤细胞表面的抗原,向胞内传递T细胞活化信号。铰链区使得嵌合抗原受体更加灵活,促进抗原受体与肿瘤抗原的结合;跨膜区是CD4、CD8、CD28等跨膜蛋白分子,起到辅助传递T细胞活化信号的作用;胞内信号肽区主要是T细胞受TCR/CD3ζ 链,负责向胞内传递第一活化信号。活化的 T细胞大量增殖,并通过分泌颗粒酶、穿孔素、IFN-γ 和 TNF-α等细胞因子直接杀伤靶点肿瘤细胞。
(图源:CAR-T design: Elements and their synergistic function)
1989年,以色利化学家和免疫学家Zelig Eshhar和他的团队设计出了第 一个 CAR-T细胞。第一代的CAR胞内只有CD3ζ,在细胞扩增、体内存活时间、以及细胞因子分泌等方面能力有限,使用率比较低,在肿瘤细胞的治疗中的效果并不好。
2002年,纪念斯隆·凯特琳癌症中心的Michel Sadelain团队,在CAR结构中引入了CD28共刺激因子,对提高初始T细胞获得持久的体外增殖和较强的细胞因子分泌起到了很好的效果,在临床试验中显著改善了CAR-T免疫活性激活的问题,并提高了其作用持久性。2004年,共刺激因子4-1BB被发现也能起到激活T细胞的作用。第二代CAR在目前的研究中运用最广泛。
2012年,研究者们在CAR结构中引入2个共刺激因子,相比于第二代CAR来说,第三代CAR在一些前临床试验数据中表现出更强更持久的作用活性,但也有报道指出,三代CAR可能会造成T细胞刺激阈值的降低,引起信号泄露,可能诱发细胞因子过量释放。
四代CAR-T细胞又被称为TRUCK T细胞 ( T-cells redirected for universal cytokine killing ),其在CAR-T细胞中引入了一个细胞因子(主要是IL-12),从而修饰肿瘤微环境,募集并活化其他免疫细胞进行免疫反应。
(图源:AACR)
1)细胞分离:血细胞分离机采集肿瘤患者血液中的单个核细胞(PBMC);
2)T细胞的激活:冷链运输到GMP标准的细胞实验室内分离并激活PBMC中的T细胞;
3)基因修饰:构建携带CAR的慢病毒载体,转入T细胞中,继续培养扩增至治疗所需剂量;
4)质量检测:CAR-T细胞经检测合格后,冷链运输到医院通过静脉回输至患者体内;
5)监控:观察疗效并严密监测不良反应,整个疗程持续3个星期左右。
(图源:AACR)
虽然CAR-T疗法已取得一定进步,但在体内增殖、持续性、肿瘤识别和杀伤能力、安全性与克服副作用等方面,还需要持续完善。
共刺激分子胞内区的嵌入的功能区会影响CAR-T的体内活性和持续性。研究表明在CAR结构中嵌入CD28能显著改善一代CAR-T在B细胞淋巴瘤患者体内的扩增和持续性。目前已有CD28、CD137、CD134、ICOS 和DAP10等多种共刺激分子的胞内区用于二代CAR的研究[1]。
图A T细胞受体的结构:由异源二聚体形式的抗原特异性α和β链组成,α和β链与CD3复合体的ε、δ、γ和ζ链紧密相连。T细胞受体与HLA结合。
图B CAR:包括与肿瘤抗原结合的单链可变片段(scFv)和细胞内的共刺激结构域,如CD28和4-1BB以及CD3ζ链,它们驱动信号激活和CAR T细胞扩增。
(图源:Longo D L , June C H , Michel S . Chimeric Antigen Receptor Therapy[J]. New England Journal of Medicine, 2018, 379(1):64-73.)
CAR的载体系统可以使用质粒、γ-逆转录病毒或慢病毒等。应用于制备CAR-T细胞的质粒或病毒都必须经过鉴别试验、复制型病毒检测、无菌试验、内毒素检测、支原体检测、相关添加成分的残留量检测、病毒滴度测定以及效力试验[2]。
不同载体系统的比较[3]:
1、CAR-T 疗法的优势
1)无MHC限制性
2)可识别的抗原种类多
3)可以在体内继续增殖
2、CAR-T 疗法的局限性
1)毒副作用
2)血液肿瘤可能复发,实体瘤治疗效果差
3)制备费用高,难以产业化
基于CAR-T治疗暴露出的局限性,目前有关CAR-T的研究和开发,主要围绕自杀开关,消除标记,药理抑制和双分子CAR设计四个方向来进行,旨在降低CAR-T细胞毒性和提高CAR-T治疗的有效性[4]。
(图源:Schmidts A , Wehrli M , Maus M V . Toward Better Understanding and Management of CAR-T Cell–Associated Toxicity[J]. Annual Review of Medicine, 2021, 72(1).)
参考文献:
[1]Longo D L , June C H , Michel S . Chimeric Antigen Receptor Therapy[J]. New England Journal of Medicine, 2018, 379(1):64-73.
[2]中国医药生物技术协会《嵌合抗原受体修饰 T 细胞(CAR-T细胞)制剂制备质量管理规范》.
[3]唐晓义, 陈虎, 张斌. 嵌合抗原受体修饰T细胞免疫治疗的机遇与挑战[J]. 解放军医药杂志, 2015, 000(001):12-25.
[4]Schmidts A , Wehrli M , Maus M V . Toward Better Understanding and Management of CAR-T Cell–Associated Toxicity[J]. Annual Review of Medicine, 2021, 72(1).
相关操作 | 产品名称 | 产品货号 | 产品规格 |
T细胞分离与培养 | 40503ES60/76 | 100mL/5*100 mL | |
40130ES76 | 500mL | ||
慢病毒构建与包装 | 41102ES10/20/40 | 10T/20T/40T | |
40802ES02/03/08 | 0.5mL/1mL/5*1mL | ||
内毒素检测与去除 | 60401ES06 | 1.7mL | |
60404ES03 | 1Kit | ||
支原体检测与清除 | MycAwayTM Plus-Color One-Step Mycoplasma Detection Kit 一步法快速支原体检测试剂盒 | 40612ES25/60 | 25T/100T |
DNA残留去除 | 20125ES25/50/60 | 25KU/50KU/100KU | |
活体成像 | 40901ES01/02/03/08/10 | 100mg/500mg/1g/5g/10g |
HB201029