产品描述
MolPure® Magnetic Swab Viral DNA/RNA Kit可快速、高效地从拭子及病毒培养上清液中分离纯化高纯度的病毒DNA或RNA。采用独特的磁珠及精心优化的缓冲体系有效捕获释放的核酸,提取的病毒DNA或RNA纯度高,质量稳定可靠,适用于各种下游应用实验,如PCR、荧光定量PCR等实验。
产品组分
组分编号 |
组分名称 |
18300ES50(50T) |
18300ES60(100T) |
18300ES70(200T) |
18300-A |
裂解缓冲液* |
10 mL |
20 mL |
40 mL |
18300-B |
漂洗液* |
15 mL |
30 mL |
60 mL |
18300-C |
洗涤液* |
12 mL |
24 mL |
48 mL |
18300-D |
洗脱液 |
5 mL |
10 mL |
20 mL |
18300-E |
磁珠悬浮液 |
1 mL |
2 × 1 mL |
4× 1 mL |
18300-F |
Carrier RNA(来源于酵母) |
310 µg |
2× 310 µg |
4× 310 µg |
18300-G |
RNase free H2O |
0.5 mL |
1 mL |
2 mL |
【注】:18300ES50裂解缓冲液*需加11 mL异丙醇,漂洗液*需加10.7 mL异丙醇,洗涤液*需加48 mL无水乙醇。
18300ES60裂解缓冲液*需加22 mL异丙醇,漂洗液*需加21.4 mL异丙醇,洗涤液*需加96 mL无水乙醇。
18300ES70裂解缓冲液*需加44 mL异丙醇,漂洗液*需加42.8 mL异丙醇,洗涤液*需加192 mL无水乙醇。
运输与保存方法
室温运输,室温保存,有效期12个月。
注意事项
注意观察各溶液是否有析出或浑浊(尤其冬季等室温为低温环境时),避免影响使用效果。
使用前按照标签注明的体积加入相应的异丙醇或无水乙醇。
3. 首次使用前,Carrier RNA(18300-F)先加入310 µL的RNase free H2O(18300-G)配制成1 µg/µL;可以根据用量情况进行分装,放置-20℃保存,避免Carrier RNA反复冻融,-20℃保存,有效期12个月。
4. 冻存样本避免反复冻融,否则会导致样本中DNA和RNA的质量下降。
5. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
实验前准备
自备设备和试剂:磁性分离架或自动化提取仪,水浴锅或金属浴,涡旋混匀仪,离心机,1.5 mL离心管等。
操作步骤
一、手工提取操作方法
1. 鼻拭子/咽拭子样本处理方式:采集样本,并与生理盐水或病毒拭子保存液彻底颠倒或涡旋振荡混匀;取200 µL液体转移至1.5 mL无核酸酶离心管中。
注:不足200 µL时,需用拭子保存液或生理盐水补足。
2. 加入400 µL裂解缓冲液*(确认已加入异丙醇),6 µL Carrier RNA溶液,立即充分摇匀。
注:可根据样本数量,在总共需要的裂解结合液中加入总共需要的Carrier RNA混匀备用,混合后每个样本加入400 µL混合液,混合液可在4℃ 保存1小时,建议现用现配。
3. 加入20 µL磁珠悬浮液。
注:磁珠使用前需在涡旋混匀仪上充分重悬或充分颠倒混匀,在一次性加样4-5次后,建议再次混匀后加样。
4. 室温(15-25℃)放置10 min,每隔2-3 min摇晃混匀1次。短暂离心收集管盖与管壁的液体。
5. 将离心管放置于磁力架上静置,磁珠完全吸附后,小心吸弃液体。
6. 向离心管中加入500 µL漂洗液*(确认已加入异丙醇),摇匀后涡旋振荡1 min。短暂离心收集管盖与管壁的液体。
7. 将离心管放回磁力架上静置,磁珠完全吸附后,小心吸弃液体。
8. 向离心管中加入500 µL洗涤液*(确认已加入乙醇),摇匀后涡旋振荡1 min。短暂离心收集管盖与管壁的液体。
9. 将离心管放回磁力架上静置,磁珠完全吸附后,小心吸弃液体。
10. 重复一遍步骤8和9。
11. 将离心管放置在磁力架上,开盖56℃晾干3-5 min,以除去残留的乙醇。
注:需确保乙醇挥发完全,但磁珠也不能过度干燥,干燥至磁珠刚出现龟裂即可。
12. 从磁力架上取下离心管,向离心管中加入50-100 µL洗脱液(推荐50 µL),振荡混匀使磁珠分散,56℃放置2 min。短暂离心收集管盖与管壁的液体。
13. 将离心管放回磁力架上静置,磁珠完全吸附后,小心将液体转移至新的无核酸酶的离心管中。
14. 溶液可置于-20℃短期保存,-80℃长期保存。
二、自动化提取操作方法
配套自动化仪器使用,以奥盛32 通道核酸提取仪器为例。
1. 按照下表向96孔深孔板中加入相应试剂(样本需平衡至室温):
列的名称 |
位置 |
试剂名称 |
用量/孔 |
样品处理列 |
1/7列 |
样本 |
200 µL |
裂解缓冲液* |
400 µL |
||
Carrier RNA溶液 |
6 µL |
||
漂洗列 |
2/8列 |
漂洗液* |
500 µL |
洗涤+磁珠列 |
3/9列 |
洗涤液*+磁珠悬浮液 |
500 µL+20 µL |
洗涤列 |
4/10列 |
洗涤液* |
500 µL |
洗脱列 |
6/12列 |
洗脱液 |
70 µL |
注:1)磁珠悬浮液使用前需在涡旋混匀仪上充分重悬或充分颠倒混匀,在一次性加样4-5次后,建议再次混匀后加样。
2)可以根据样本数量,在总共需要的裂解缓冲液中加入总共需要的Carrier RNA混匀备用,混合液在4℃ 1 h内稳定。
2. 按照提取仪的位置,正确安放96孔板及磁棒套。
3. 按以下程序进行自动化提取实验。
4.自动化程序结束后,将第6、12列洗脱液转移至干净的无核酸酶离心管中,溶液可置于-20℃短期保存,-80℃长期保存。
奥盛32通道核酸提取仪器的提取程序
步骤 |
孔位 |
混合时间(min) |
吸磁时间(sec) |
等待时间(min) |
容积(μL) |
混合速度(1-10) |
温度(℃) |
混合位置(0-100%) |
混合幅度(1-100%) |
吸磁位置(0-100%) |
吸磁速度(1-10) |
取磁珠 |
3 |
0.3 |
70 |
0 |
500 |
7 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
裂解结合 |
1 |
3 |
60 |
0 |
600 |
5 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
清洗1 |
2 |
1 |
40 |
0 |
500 |
7 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
清洗2 |
3 |
1 |
40 |
0 |
500 |
5 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
清洗3 |
4 |
1 |
40 |
1.5 |
500 |
5 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
洗脱 |
6 |
1.5 |
70 |
0 |
70 |
6 |
56 |
0 |
80 |
0 |
1 |
弃磁珠 |
3 |
0.3 |
0 |
0 |
500 |
7 |
/ |
0 |
80 |
0 |
1 |
注:“选项”中选择“升温动作同步”,磁吸方式选择“分9段磁吸”。
HB20220224