皮下成瘤 | 小鼠肝癌(Hepa1-6细胞系)皮下荷瘤模型构建案例
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2026-02-04
皮下成瘤│小鼠肝癌(Hepa1-6细胞系)皮下荷瘤模型构建案例
实验所用产品
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40183ES |
一、细胞准备与悬液制备
细胞培养:使用处于对数生长期的小鼠肝癌细胞系Hepa1-6。
细胞消化与收集:使用含0.25% EDTA的胰酶消化细胞,用含血清培养基中和后离心收集。
清洗与重悬:细胞沉淀用预冷的PBS清洗两次,离心弃上清。进行精确细胞计数后,用预冷的PBS将细胞重悬并调整浓度为 3×10⁷个细胞/mL。悬液置于冰上备用。
二、细胞-基质胶混合物的制备
低温操作:全过程在冰上操作。
试剂准备:提前将分装储存于-20℃的基质胶转移至4℃冰箱过夜融化。
等比例混合:在预冷的离心管中,取 100 µL 融化并预冷的基质胶与等体积(100 µL)的上述细胞悬液(浓度为3×10⁷个细胞/mL)轻轻混匀,避免产生气泡。
保持低温待用:混合完成后,将混合物置于冰上。立即用预冷的注射器吸取全部 200 µL 混合液准备接种,以尽量减少基质胶凝固。
三、C57BL/6小鼠皮下接种操作
动物准备:抓取C57BL/6小鼠,用剃毛器或脱毛膏去除其左侧腋下区域的毛发,并用75%酒精棉球消毒皮肤。
皮下注射:
使用已吸取混合液的注射器(通常使用1 mL注射器配合适当针头)。
左手固定小鼠,使其左侧皮肤舒展。针头以较小角度(约10-30度)刺入消毒区域皮下,平行于体表推进一小段距离形成皮下隧道。
缓慢、稳定地将全部 200 µL 细胞-基质胶混合液注入皮下,可见形成一圆形皮丘。
注射后等待数秒,缓慢拔出针头,并用干棉球轻压针孔片刻,防止液体渗出。
术后观察:将小鼠放回笼内,观察其短期状态是否正常。
四、实验结果
注射后四天,可以看见明显的米粒大小的肿瘤硬块,下图为注射后第9天的肿瘤体积大小。未用基质胶的肿瘤体积最小,使用翌圣基质胶的小鼠肿瘤体积最大。
图1未用基质胶,肿瘤体积约为185.5mm3;图2使用其他品牌的基质胶,肿瘤体积约为188.7mm3;图3使用翌圣基质胶,肿瘤体积约为:0.5×7.7×10.45×7.7=309.8mm3
(数据来源:浙江理工大学)
皮下成瘤实验小贴士
细胞状态优先:确保使用处于对数生长期、活性高(>95%)的细胞。接种前进行准确的细胞计数,并尽量缩短细胞在冰上或悬液状态下的等待时间,以维持最佳活力。
严格低温操作:基质胶在4℃以上会迅速聚合。所有涉及基质胶的步骤(液化、分装、混合)务必在冰上完成,注射器也应预冷,这是防止混合物在针头内凝固、保证注射顺畅的关键。
注射技巧:进行皮下注射时,针头刺入皮肤后应平行于体表推进一小段,形成“隧道”后再缓慢推液。注射后可轻压针孔片刻,能有效防止细胞悬液渗出,确保接种量的准确。
规范监测:待肿瘤可触及后,建议由同一操作者定期、轻柔地使用游标卡尺测量。记录肿瘤的最长径和与之垂直的最短径,并采用统一公式计算体积,以减少人为误差,获得可靠的生长曲线。





