细胞转染 | Hela人宫颈癌细胞DNA转染案例(24孔板)
实验所用试剂清单
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试剂名称 |
货号 |
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Hieff Trans® LipoBooster 3000 Transfection Reagent Lipo3000转染试剂 |
40801ES |
细胞培养与传代(T25)
润洗:吸弃旧培养基,加入3-4 mL常温PBS轻晃润洗10-20秒后吸弃。
消化:加入1 mL胰酶润湿瓶底,37°C孵育消化。
吹落:待细胞间隙变大、形态变圆时,直接用胰酶轻轻吹打下细胞。
终止:加入2-3 mL完全培养基终止消化,吹打混匀成细胞悬液。
接种:收集悬液,200 ×g离心3-5分钟,弃上清,用新鲜培养基重悬后分瓶,补足培养基继续培养。
细胞转染(24孔板)
一、 实验前准备
1. 细胞准备: 转染前24小时,用胰酶消化并重悬细胞后,进行细胞计数。以合适的密度将细胞接种于24孔板(或其他规格培养器皿)中,每孔加入0.5 mL完全培养基。目标是转染时细胞的汇合度达到60% - 80%。
2. 试剂准备:
o 质粒DNA: 使用高纯度(如试剂盒提取)的质粒DNA,质粒浓度最好高于1000 ng/μL。
o 转染试剂: 将LipoBooster 3000试剂在4°C冰箱外静置回温,使用前轻轻吹打。
o 无血清培养基: 准备用于稀释DNA和转染试剂的基础培养基(如Opti-MEM)。
二、 转染复合物制备
1. 稀释DNA: 取一个无菌离心管,加入25 μL的无血清培养基,再加入0.5 μg质粒DNA,轻轻混匀。然后再加入1 μL的Enhancer增强剂,吹打混匀,获得稀释的质粒DNA溶液。
2. 稀释转染试剂: 取另一个无菌离心管,25 μL的无血清培养基,再加入1 μL的LipoBooster 3000转染试剂轻轻吹打混匀。
3. 混合孵育: 将稀释好的DNA溶液加入稀释的转染试剂管中,轻轻吹打混匀。室温下静置孵育10-15分钟,以形成稳定的DNA-转染试剂复合物。
三、 细胞转染
1. 换液: 转染前,小心吸去细胞原有的培养基,更换为0.5毫升新鲜预热的完全培养基。
2. 加复合物: 将孵育好的DNA-转染试剂复合物(总体积约50 μL)逐滴均匀地加入到细胞培养基中,轻轻摇晃培养板使其混匀。
3. 孵育: 将细胞放回37°C、5% CO₂培养箱中培养。
四、 转染后处理
1. 换液: 转染后4-6小时,仔细观察细胞状态。若出现明显毒性,应吸弃含复合物的培养基,更换为0.5 mL新鲜预热的完全培养基。若细胞状态良好,可以不换液。
2. 检测: 继续培养24-72小时后,根据实验设计(如表达荧光蛋白、检测mRNA或蛋白水平)进行转染效率或功能检测。
小贴士:
1、如果转染后有显著的细胞毒性,可以在6h换液或将增强剂用量减半,可以避免细胞毒性问题;
2、如果转染效率比较低,可以通过提高转染试剂用量,能够有效提高转染效率;
3、稀释质粒和转染试剂,最好使用opti-MEM;
实验结果分析
在Hela人宫颈癌细胞转染DNA(9500bp),用翌圣 LipoBooster 3000和进口品牌T3000转染,并通过荧光显微镜观察转染效率。
进口品牌T3000 |
翌圣LipoBooster3000 |
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数据来源:清华大学 |
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使用翌圣 LipoBooster 3000转染试剂在Hela人宫颈癌细胞转染质粒DNA,结果显示,翌圣 LipoBooster 3000 转染试剂能够高效转染。
不同培养皿LipoBooster3000转染试剂用量使用指南
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培养容器 |
培养基用量 |
DNA转染 |
siRNA转染(终浓度50 nM) |
||||
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培养基体积 |
复合物中Opti-MEM体积 |
DNA(μg) |
LipoBooster 3000转染试剂(μL) |
Enhancer转染增强剂(μL) |
siRNA体积(初始浓度20 μM) |
LipoBooster 3000转染试剂(μL) |
|
|
96孔 |
100 μL |
2×5 μL |
0.1 |
0.2 |
0.2 |
0.25 μL |
0.3 |
|
48孔 |
250 μL |
2×12.5 μL |
0.25 |
0.5 |
0.5 |
0.625 μL |
0.75 |
|
24孔 |
500 μL |
2×25 μL |
0.5 |
1 |
1 |
1.25 μL |
1.5 |
|
12孔 |
1 mL |
2×50 μL |
1 |
2 |
2 |
2.5 μL |
3 |
|
6孔 |
2 mL |
2×125 μL |
2.5 |
5 |
5 |
5 μL |
7.5 |
|
60 mm |
5 mL |
2×250 μL |
5-10 |
10-20 |
10-20 |
12.5 μL |
20 |
|
10 cm |
10 mL |
2×500 μL |
15-25 |
30-50 |
30-50 |
25 μL |
40 |
|
T25 |
6 mL |
2×250 μL |
6-12 |
12-24 |
12-24 |
15 μL |
24 |
|
T75 |
15 mL |
2×750 μL |
20-40 |
40-80 |
40-80 |
37.5 μL |
60 |
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