自从1985年报道日本学者首次采用葡聚糖硫酸钠(dextran sulphate sodium, DSS)制备出仓鼠溃疡性结肠炎模型后，已有大量数据证明DSS结肠炎模型的病因、临床症状、病理改变及治疗应答均与人类溃疡性结肠炎(ulcerative colitis，UC)相似。因此，DSS结肠炎模型对于研究UC病因、发病机制及肿瘤疾病，成为了一种很重要治疗手段，也是目前应用最为广泛的UC模型之一。

图1. DSS溃疡病结肠炎模型发展历程

DSS是葡聚糖的聚阴离子衍生物，由葡聚糖和氯磺酸的酯化反应形成，分子式为 (C₆H₇Na₃O₁₄S₃)_n，MW：36000~50000不等, 含硫量一般为17%-20%。DSS常被用于诱导结肠炎模型，其诱导机制虽尚未明确。目前的研究主要认为DSS增加肠道通透性、破坏肠黏膜屏障、上调某些细胞因子（肿瘤坏死因子、白介素、干扰素、IL-10和IL-12）、激活某些通路（NF-κB通路和TRPV1通路）或肠道菌群失调等有关。根据给药时间、以及给药周期可分为急性和慢性两种结肠炎模型。

慢性结肠炎模型则可采用低浓度DSS建立，但给药时间较长。如给予小鼠1%~3% DSS自由饮用数个星期即可。慢性结肠炎模型表现：小鼠结肠明显缩短，上皮增生、黏膜纤维化和淋巴结肿大；小部分动物可见肉芽组织增生和肿瘤样改变。

图2. DSS慢性和急性造模模型

事实上，除了大小鼠可以用来DSS造模以外，斑马鱼、兔子、豚鼠、猪、猴等动物也可做结肠炎模型。研究发现，不同的物种造模过程中，DSS的浓度和造模周期会存在部分差异。

1. BALB/c小鼠，雌，6-8周，25 g；

2. 用无菌水配置3%DSS饮用水，然后用0.22μm的滤膜过滤；

3. 给小鼠连续饮用7天，HE染色；

4.实验结果：小鼠的组织水肿充血，有明显的炎症现象。

图3. DSS急性结肠炎切片HE染色结果^[1]

1. 将斑马鱼胚胎培养在含甲基蓝的E3胚胎培养基中，28.5 ℃，培养至1dpf；

2. 用E3培养基配置0.5%DSS饮用水，然后用0.22μm的滤膜过滤；

3. 用0.5%的DSS处理斑马鱼，从3dpf处理到6dpf。

4.实验结果：0.5%的DSS药物处理均会导致斑马鱼肝脏颜色变深，产生炎症应激。

图4. DSS导致斑马鱼肝脏产生炎症反应^[2]

1.四到五天大的约克郡小猪，实验组：灌注DSS，对照组：灌注生理盐水；

2.每只小猪每日摄入量1.25g DSS/kg，灌注5天；

3.实验结果：灌注DSS后，实验组的血浆D-甘露醇摄取率显著高于对照组，表明小猪出现了肉眼可见的肠炎症状。

图5. DSS诱导致小猪体内D-甘露醇浓度高于对照组^[3]

1.将5~10日的雌果蝇放在一个装有2.5×2.5×1cm的空小瓶中培养中，用5%蔗糖溶液润湿的3.75-cm色谱纸（Fisher）进料介质；

2.用5%的蔗糖溶液分别配制含有不同成分的喂食培养基，类别包括各含3%的DSS，25μg/ml博来霉素；

3.果蝇放入含有层析纸的瓶中，29℃培养三天，期间每天将存活的果蝇移入含有新鲜培养基的空瓶中；

4.实验结果：DSS有致死的功能，且DSS诱导ISC前体细胞增殖。

图6. DSS诱导果蝇中ISC前体细胞增殖^[4]

目前翌圣生物提供的葡聚糖硫酸钠盐（DSS，MW:36000~50000），专门用于慢性和急性结肠炎建模。具有质量高、纯度高、重复性好等特点。客户可根据实验目的调整DSS浓度和给药时间，建立急性、慢性和急慢性交替性模型。造模操作简便，性价比高，重复性好。其造模成功与否主要与DSS浓度、分子量、给药时间以及动物种属有很大关系。

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