在反转定量实验中，不论是实验小白还是老司机，都会遇到各种不同的实验问题。解决问题不仅要浪费额外的样品和试剂，还要占用大量时间一遍遍地重复和分析，容易被实验折磨得焦头烂额。那实验过程中应该注意哪些细节呢？这里为大家精心总结了反转定量实验中的注意事项，希望助大家一臂之力。

反转定量实验包括RNA提取与质量评估，反转录和qPCR三大步骤，每个步骤都有很多注意事项，步步为营方能做出更加严谨的数据。

RNA提取完成后，通常需要对RNA的质量进行评估，合格后才可进行后续实验。评估方法有分光光度计，琼脂糖凝胶电泳，Agilent 2100分析等，其中最常用的有分光光度计和琼脂糖凝胶电泳法检测。我们需要注意的是这两种方法需要搭配使用，才能完成对RNA浓度、纯度和完整度的检测分析，以保证RNA的质量。

分光光度计主要用于测定RNA的浓度和纯度，但不能对RNA的完整度和基因组残留进行检测。其中，A260/280和A260/230是RNA纯度检测的重要参数，可根据其数值的波动，检测RNA的纯度：

琼脂糖凝胶电泳检测可以分析RNA的完整度，基因组和蛋白残留，但不能对RNA的浓度准确定量，也不能检测有机试剂的残留。以真核生物RNA模板为例：

将RNA进行琼脂糖凝胶电泳，若胶图上只有28sRNA、18sRNA和5.8sRNA三条单一的条带，说明提取的RNA完整度良好。如果出现拖带的现象，表示RNA部分降解。

若胶孔和28sRNA条带之间出现单一明亮的条带，表示可能有基因组DNA残留。若胶孔内出现条带，说明可能有蛋白等大分子物质残留。

RNA提取完成后，需要反转成cDNA才能进行后续实验，所以反转录步骤是必不可少的。

常见代表性反转录酶有AMV RTase和MMLV RTase两大类：AMV RTase的RNase H活性强，合成长度短，合成量低，热稳定性好（42～55℃）；MMLV RTase的RNase H活性弱，合成长度长，合成量高，热稳定性差（37～42℃）。

由于RNase H酶具有降解RNA模板的功能，所以在反转录时应该优先选择RNase H活性弱的MMLV ，而且后期经过基因工程改造，MMLV热稳定性已达到质的飞跃。以Yeasen的Hifair® Ⅲ代反转录酶为例，该酶经基因工程改造，删除了RNase H活性，同时反应温度可达60℃，针对高GC及富含复杂二级结构的模板具有更高的反转录效率。

通常反转录引物可分为三类：Oligo dT，随机引物和基因特异性引物。根据不同的实验需求选择适合的引物进行使用。

反转录产物是一个混合体系，出了目的产物外，含有剩余的引物、RNA、dNTP、各种蛋白和盐离子成分，这些成分会影响分光光度计检测出来的浓度值，cDNA浓度的测定结果意义不大。经实验验证，反转录体系中dNTP 投入量的多少会使cDNA浓度的测定结果产生较大差异，但最终Ct值几乎一致，qPCR检测结果△Ct＜1, 与 Nanodrop 定量结果无线性关系。

定量方法分为相对定量和绝对定量。相对定量可用于检测某种处理方法对基因表达的影响，检测基因在不同时间的表达差异和比较基因在不同组织中的表达差异；绝对定量可对病毒中核酸的量进行检测等。大家在做实验时，一定要根据自己的实验选择合适的定量方法。

qPCR引物设计的好坏，直接关乎着扩增效率高低，产物特异性与否。所以正确设计出好的引物是qPCR成功的第一步。引物设计在满足常规引物设计的原则上还要注意以下原则：

在定量反应过程中，ROX能够均一化校正仪器的光程差，移液误差或蒸发冷凝导致的体积差等，提高结果的重复性。但需要注意的是ROX的选择与仪器相关，如果qPCR仪有自动校正孔间差的功能，就不需要添加ROX，反之则需要选用含ROX校正的试剂。在买试剂时一定要根据所用的仪器型号选择正确ROX，避免后期出错。

反应体积优先推荐20 μL和50 μL。体系配制时要注意以下事项：

不同的荧光定量酶可能反应条件不一样。比如Yeasen的荧光定量酶就分为配体法热启动酶和抗体法热启动酶，关于这两种酶反应条件的设定需要注意以下几点：

以上就是对反转定量实验注意事项的详细总结，希望能够对大家的实验有所帮助。