1.组织离体后迅速转移至预冷组织保存液中，2-8℃低温转运至实验室，确保细胞活性。

2.Ceturegel^®基质胶（40192ES）置于4℃冰箱过夜或冰上缓慢解冻；Cebrary^®前列腺癌类器官培养基（41438ES）

3.在生物安全柜中，将组织转移至含20mL预冷DPBS的离心管中，浸泡10分钟，弃上清，重复2-3次。

4.将组织转移至无菌培养皿，去除表面杂质、坏死组织及脂肪，用无菌剪刀或手术刀剪碎至直径约0.5-1mm³碎块。

5.将剪碎组织转移至新的50mL离心管，加入20mL预冷DPBS清洗1分钟，弃上清，重复2-3次。

6.加入10mL预热的组织消化液（41423ES），37℃摇床或培养箱中消化30-60分钟。期间每10分钟镜检观察，待组织块明显分散、悬液变浑浊时终止消化。

7.加入20mL DPBS（约2倍体积）终止消化，用移液器反复吹打至无明显大块残留。

8.100μm细胞筛网过滤去除未消化组织，收集滤液。向原消化管中加DPBS再次吹打并过滤，合并滤液，定容至40mL。

9.在4℃，300×g条件下离心5分钟，弃上清。

10.红细胞裂解（可选）：若沉淀中红细胞较多，加入2-5mL红细胞裂解液，室温静置1-2分钟，加DPBS终止裂解，再次离心。

11.用5mL DPBS重悬沉淀，离心洗涤1次，去除残留酶及裂解液。加入1mL DPBS重悬，计数并评估活率。

12.根据计数结果，使用DPBS将细胞悬液体积调整至5mL，再次离心获得浓缩细胞沉淀。

13.用预冷枪头，将预冷Ceturegel^®基质胶与细胞沉淀按1:1体积比轻柔混匀（基质胶终浓度≥70%），调整至每μL基质胶含100-1000个细胞。全程冰上操作，避免气泡。

14.立即用预冷枪头吸取50μL细胞-基质胶混合液，滴加于24孔板孔底中央，确保液滴圆整、不与孔壁接触。

15.将培养板转移至37℃、5% CO₂培养箱，静置孵育15-30分钟至基质胶完全凝固。沿孔壁缓慢加入500μL预热的Cebrary^®前列腺癌类器官完全培养基，避免冲散胶滴。

16.置于37℃培养箱中继续培养，每2-3天换液，每日镜检观察类器官形成、形态与生长状态。前列腺癌类器官生长较慢，一般需要2-3周才能生长至汇合状态。前列腺癌类器官生长相对缓慢，一般需要2-4周才能形成可用于实验的类器官。

图2. 前列腺癌类器官培养情况

传代：当类器官生长密集、培养基变黄或胶滴出现中心坏死时进行传代。吸去培养基，用PBS洗涤，加入消化液37℃消化5-15分钟，轻柔吹打后加入终止液，300×g离心5分钟，按1:2~1:4比例重新包埋于新鲜基质胶中。

冻存：将消化后的类器官悬液离心，弃上清后加入适量类器官冻存液（41422ES）重悬，调整密度至200–500个/mL，分装至冻存管（1mL/管）。将冻存管置于程序降温盒中，以-1℃/min速率降温至-80℃，24h后转移至液氮中长期保存。

复苏：从液氮中取出冻存管，立即放入37℃水浴快速晃动1–2min至大部分融化。将悬液转移至含5mL预温培养基的离心管中，轻轻混匀，离心后弃上清，再用5mL培养基重悬洗涤一次。最后以适量培养基重悬，与基质胶混合后接种至培养板，置于37℃、5% CO₂培养箱中培养。