Hieff NGS® DNA Selection Beads基于SPRI (Solid Phase Reverse Immobilization)原理，配合精心优化过的缓冲体系，可用于二代测序文库构建过程中的DNA片段分选、纯化。本产品可适用于各品牌的DNA、RNA建库试剂盒，和目前广泛使用的AMPure XP Beads使用方式相同，片段回收效率和文库大小分布均与AMPure XP Beads高度吻合。
品质保证：采用进口原材料，品质高度稳定。
无缝替换：产品原理、产品操作和实验结果与AMPure XP保持高度一致。
兼容性高：兼容目前市面上所有的DNA/RNA建库试剂盒。
批次稳定：严格的批次性能与稳定性质控。
- 高效的纯化回收效率
DNA磁珠纯化过程中会有部分样本损失，回收效率可通过公式计算：回收效率 =（纯化后DNA质量 / Input DNA质量）× 100%。数据显示，12601磁珠批次稳定性良好，回收效率与XP磁珠相当，是高性价比的替代产品。
2~8℃保存，有效期18个月。
Q：12601可以用来纯化DNA吗？
A：可以纯化150bp以上的DNA片段，如果纯化的DNA中含有较多的150bp以下的建议用货号12600的产品，可以纯化50bp以上的DNA。
Q：12601可以分选1Kb或以上的DNA片段吗？
A：需要自行摸索体系，目前筛选的片段范围确定的体系为说明中的体系，其它片段分选的可以参考说明书中的分选体系调整。
Q： 不小心将磁珠放到-20℃，但未结冰，是否可以继续使用？
A：长时间冻住不建议使用，因为低温会破坏磁珠的结构，短时间冻融一次NGS文库分选和纯化性能影响不大，但实际以具体测试结果为准。
Q：磁珠未开封的时候 4℃保存，开封后一直室温保存使用，是否会影响磁珠的回收性能？
A：室温放置对磁珠的回收性能会有一定影响，不建议室温放置太久，使用完后建议 4℃ 保存。PEG 分离效果易受 pH、温度等影响。
Q：磁珠纯化原理
A：DNA 分选纯化磁珠是基于一种固相载体可逆化固定（SPRI）的技术，磁珠buffer中一般包含：磁珠、DNA、PEG、盐离子（主要是 Na+）等。DNA分子在PEG和NaCl作用下，会脱水缩合导致DNA构象改变并发生聚集沉淀，带负电荷的，当使用无酶水或TE等低盐和低PEG含量的缓冲液时可以洗脱结合的DNA分子。
Q：磁珠分选的原理
A：不同PEG和盐离子浓度下，不同长度DNA的构象不同，且长片段DNA带有更多负电荷，因此磁珠一般会优先吸附大片段DNA。分选一般需要加两轮磁珠，第一轮磁珠结合分子量较大的DNA，通过丢弃磁珠去除这部分产物，此时目的大小DNA在上清中；第二轮磁珠结合剩余产物中分子量较大的DNA，通过丢弃上清去除分子量较小的DNA，此时目的大小DNA在磁珠上，通过两轮磁珠达到分选的目的。
Q：12601可以纯化或回收150bp以下的片段吗？
A：不建议使用12601，建议使用12600，最低可回收100bp左右的片段，50bp以上的回收率可能会有影响。
Q：是否可以纯化单链DNA，该使用多少磁珠？
A：磁珠可以吸附双链DNA和单链DNA，但不能区分单链或双链DNA。磁珠纯化单链DNA的倍数可以参考双链的说明书。
Q：是否是选择性吸附DNA，可以去除样本中的RNA吗？
A：12601ES是非特异性吸附磁珠，也会吸附RNA，如果要去除RNA,需要用RNase A处理。
Q：可以用于RNA纯化和分选吗？
不建议使用，虽然磁珠也可以吸附RNA片段，但磁珠Buffer是根据DNA特性设计的，不利于RNA结构的稳定，RNA纯化建议使用RNA纯化磁珠（货号12602ES)。
Q：磁珠回收率低可能的原因是什么？
A：1）磁珠与DNA 混匀不充分，未能充分吸附。建议反应体系充分混匀；
2）磁珠比例不对，建议按照说明书进行选择合适的比例；
3）孵育时间不足，保证孵育时间至少 5 min；
4）磁珠分选时，二轮磁珠吸附的时候吸到磁珠。可在 200μL枪头前串联 10μL枪头用于移液，可防止吸到磁珠；
5）磁珠洗涤时的乙醇非现配，导致乙醇浓度过低，建议乙醇浓度不低于 70%，小片段不低于80%；
6）干燥过度：磁珠长时间干燥导致表面龟裂，DNA 难以洗脱，得率降低；建议干燥时间不宜过长，表面刚出现龟裂即可；
7）洗脱液体积不足：最终洗脱液应完全覆盖管内磁珠。
8）样本原因：样本纯度低，有杂质，样本中含有较多杂质时，可能会导致磁珠聚团板结，导致洗脱不充分，可以用枪头尽量吹散磁珠，延长洗脱时间，增加产物回收率；样本中含有较多大片段，大片段会导致磁珠聚团，洗脱时可以延长时间，必要时可以37度孵育，提升得率。
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