CelCulSF™ NK Cell Culture Medium(Serum-free) NK细胞无血清培养基

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产品简介

 

CelCulSFTM NK Cell Culture Medium(Serum-free)培养基是一款专为NK细胞培养而设计的无血清(Serum-Free)、无异源动物源成分使用药用级别原辅料的扩增培养试剂盒NK细胞无血清培养基适用于自体外周血或脐血PBMC,经体外活化扩增获得纯度较高的NK细胞。

 

组分信息

 

组分编号

组分名称

40146ES84

40146-A

NK细胞添加物A

200 μL

40146-B

NK细胞添加物B

500 μL

40146-C

NK细胞添加物C

500 μL

40146-D

NK细胞添加物D

500 μL

40146-E

NK细胞无血清基础培养基

1000 mL × 2瓶

 

成分说明

 

纯因子法,药用级别原辅料,无血清培养,无需饲养细胞。

 

储存条件

 

NK细胞无血清基础培养基2~8℃有效期18个月

NK细胞添加物-20℃,有效期18个月

 

使用说明

 

1.包被:细胞活化瓶预处理(第-1天)

40146-A和13 mL D-PBS混匀,加入175 cm2培养瓶中,平放晃匀铺满,或40146-A和9 mL D-PBS混匀,加入75 cm2培养瓶中,平放晃匀铺满,4℃冰箱平放过夜。次日种瓶前吸弃包被液。

2.种瓶:外周血 PBMC 分离与诱导(第0天)

1)分离血浆:取少量血样(约300 μL)划线或滴入平皿进行检菌。室温下离心15分钟,取离心上清作为血浆。

2)血浆灭活:上层血浆56℃灭活30 min,置于4℃冰箱30 min,取出在室温下离心10 min,取上清备用。

3)分离PBMC:等体积的生理盐水与血细胞沉淀混匀,加到Ficoll层上使分层保持清晰,室温下离心25 min。

4)洗涤细胞:吸取PBMC层,加生理盐水吹打混匀,室温下离心5 min(脐血建议8 min),再次洗涤细胞。

5)细胞计数:弃上清,用少量完全培养基重悬细胞,吸取少量细胞计数。调整细胞密度2×106/mL。

6)种瓶:吸弃包被液,将细胞悬液中加入40146-B,灭活血浆2.5 mL,转入培养瓶内,培养终体积约25 mL。剩余血浆4℃密封保存备用。

注:完全培养基的配置:每瓶培养基加入1支IL-2,终浓度为1000 IU/mL。包被瓶从冰箱取出的时间约为细胞加入前的10 min。

3.培养 第一次补液(第3天)

1)显微镜下观察细胞,确定是否可以补液①瓶底贴壁的克隆团达到瓶底面积的30%以上。②颜色与初始培养液比偏黄。(如无法判断,可推迟一天补液。)

2)补液操作。加入40146-C和3.5 mL灭活血浆,再加入约46.5 mL完全培养基,培养终体积为75 mL。

注:请勿吹打细胞

4.培养 第二次补液(第5天)

加入40146-D,和8.75 mL灭活血浆,再加入约166.25 mL完全培养基,培养终体积定容到250 mL。

注:请勿吹打细胞,第5天开始细胞增殖较明显,中大团变多且分裂相形态细胞居多。

5.装袋第三次补液(第7天)

剩余血浆加入培养瓶,再将培养瓶中的细胞悬液转入细胞培养袋中,随后补液(约350 mL完全培养基,也可按密度补液,补液后密度在0.6~1×106/mL范围内),培养终体积定容到600 mL。

注:装袋前,轻微拍打培养瓶底部细胞,如克隆团太大可进行吹打,注意吹打的力度避免将克隆团吹成单个细胞。

6.分袋第四次补液(第9天)

1)配置另一瓶NK完全培养基。

2)将培养袋中的细胞悬液分出一半加入新的培养袋,随后每袋再补入300 mL完全培养基。(培养终体积为1200 mL)

7.第五次补液(第11/12天)

将剩余的约800 mL完全培养基均分到2个培养袋中,每袋终体积约1000 mL。

8.检验(第13天)

5 mL注射器分别从袋内抽取少量细胞悬液进行细菌、内毒素、支原体检测。

9.收获(第14/15天)

正常情况下,第14、15天各收获1000 mL细胞悬液。

 

注意事项

 

1.血样要求

1)外周血PBMC>3×107cells(推荐采血量50 mL左右,用肝素钠真空采血管)建议采血后4小时内操作,建议做淋巴细胞亚群分析。不建议使用冻存的外周血。

2)脐带血(不含抗凝剂)推荐采血量>50 mL,建议把采血袋中抗凝剂抽出至少一半(大约14 mL),其他容器建议抗凝剂不超过14%(或PBMC>3×107cells),采血后12小时内操作。

2.种瓶密度:PBMC铺瓶的起始细胞密度建议2×106/mL,脐血可适当提高初始铺瓶细胞密度。

3.补液密度:补液前密度一般在1.5~2×106/mL;补液后密度一般在0.6~1×106/mL,不可低于0.6×106/mL。

4.培养基的使用:

1)每次补液前需要将培养基在室温下自然复温。

2)禁止将整瓶培养基放入37℃孵箱复温,否则会加速补液培养基中细胞因子的失活。

3)配置好的扩增培养基(含IL-2)时效较短,超过一周不建议使用,尤其是活化前期(前7天)。

5.灵活掌握补液时机:细胞扩增状态不理想时,可推迟补液时间,但是尽量不要调整补液的体积尤其注意第一次补液的时机。

6.包被时间40146-A包被后需4℃平放过夜。

7.培养初期不要随意晃动培养瓶:否则活化的克隆团容易飘起来,而降低包被因子对细胞团的活化。

8.本产品仅作科研用途。

9.为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。

 

Ver.CN20241016

 

400-6111-883