产品简介
CelCulSFTM NK Cell Culture Medium(Serum-free)培养基是一款专为NK细胞培养而设计的无血清(Serum-Free)、无异源动物源成分、使用药用级别原辅料的扩增培养试剂盒。NK细胞无血清培养基适用于自体外周血或脐血PBMC,经体外活化扩增获得纯度较高的NK细胞。
组分信息
组分编号 |
组分名称 |
40146ES84 |
40146-A |
NK细胞添加物A |
200 μL |
40146-B |
NK细胞添加物B |
500 μL |
40146-C |
NK细胞添加物C |
500 μL |
40146-D |
NK细胞添加物D |
500 μL |
40146-E |
NK细胞无血清基础培养基 |
1000 mL × 2瓶 |
成分说明
纯因子法,药用级别原辅料,无血清培养,无需饲养细胞。
储存条件
NK细胞无血清基础培养基,2~8℃,有效期18个月;
NK细胞添加物,-20℃,有效期18个月。
使用说明
1.包被:细胞活化瓶预处理(第-1天)
40146-A和13 mL D-PBS混匀,加入175 cm2培养瓶中,平放晃匀铺满,或40146-A和9 mL D-PBS混匀,加入75 cm2培养瓶中,平放晃匀铺满,4℃冰箱平放过夜。次日种瓶前吸弃包被液。
2.种瓶:外周血 PBMC 分离与诱导(第0天)
1)分离血浆:取少量血样(约300 μL)划线或滴入平皿进行检菌。室温下离心15分钟,取离心上清作为血浆。
2)血浆灭活:上层血浆56℃灭活30 min,置于4℃冰箱30 min,取出在室温下离心10 min,取上清备用。
3)分离PBMC:等体积的生理盐水与血细胞沉淀混匀,加到Ficoll层上使分层保持清晰,室温下离心25 min。
4)洗涤细胞:吸取PBMC层,加生理盐水吹打混匀,室温下离心5 min(脐血建议8 min),再次洗涤细胞。
5)细胞计数:弃上清,用少量完全培养基重悬细胞,吸取少量细胞计数。调整细胞密度2×106个/mL。
6)种瓶:吸弃包被液,将细胞悬液中加入40146-B,灭活血浆2.5 mL,转入培养瓶内,培养终体积约25 mL。剩余血浆4℃密封保存备用。
注:完全培养基的配置:每瓶培养基加入1支IL-2,终浓度为1000 IU/mL。包被瓶从冰箱取出的时间约为细胞加入前的10 min。
3.培养 第一次补液(第3天)
1)显微镜下观察细胞,确定是否可以补液。①瓶底贴壁的克隆团达到瓶底面积的30%以上。②颜色与初始培养液比偏黄。(如无法判断,可推迟一天补液。)
2)补液操作。加入40146-C和3.5 mL灭活血浆,再加入约46.5 mL完全培养基,培养终体积为75 mL。
注:请勿吹打细胞
4.培养 第二次补液(第5天)
加入40146-D,和8.75 mL灭活血浆,再加入约166.25 mL完全培养基,培养终体积定容到250 mL。
注:请勿吹打细胞,第5天开始细胞增殖较明显,中大团变多且分裂相形态细胞居多。
5.装袋第三次补液(第7天)
剩余血浆加入培养瓶,再将培养瓶中的细胞悬液转入细胞培养袋中,随后补液(约350 mL完全培养基,也可按密度补液,补液后密度在0.6~1×106个/mL范围内),培养终体积定容到600 mL。
注:装袋前,轻微拍打培养瓶底部细胞,如克隆团太大可进行吹打,注意吹打的力度避免将克隆团吹成单个细胞。
6.分袋第四次补液(第9天)
1)配置另一瓶NK完全培养基。
2)将培养袋中的细胞悬液分出一半加入新的培养袋,随后每袋再补入300 mL完全培养基。(培养终体积为1200 mL)
7.第五次补液(第11/12天)
将剩余的约800 mL完全培养基均分到2个培养袋中,每袋终体积约1000 mL。
8.检验(第13天)
5 mL注射器分别从袋内抽取少量细胞悬液进行细菌、内毒素、支原体检测。
9.收获(第14/15天)
正常情况下,第14、15天各收获1000 mL细胞悬液。
注意事项
1.血样要求
1)外周血PBMC>3×107cells(推荐采血量50 mL左右,用肝素钠真空采血管),建议采血后4小时内操作,建议做淋巴细胞亚群分析。不建议使用冻存的外周血。
2)脐带血(不含抗凝剂)推荐采血量>50 mL,建议把采血袋中抗凝剂抽出至少一半(大约14 mL),其他容器建议抗凝剂不超过14%(或PBMC>3×107cells),采血后12小时内操作。
2.种瓶密度:PBMC铺瓶的起始细胞密度建议2×106个/mL,脐血可适当提高初始铺瓶细胞密度。
3.补液密度:补液前密度一般在1.5~2×106个/mL;补液后密度一般在0.6~1×106个/mL,不可低于0.6×106个/mL。
4.培养基的使用:
1)每次补液前需要将培养基在室温下自然复温。
2)禁止将整瓶培养基放入37℃孵箱复温,否则会加速补液培养基中细胞因子的失活。
3)配置好的扩增培养基(含IL-2)时效较短,超过一周不建议使用,尤其是活化前期(前7天)。
5.灵活掌握补液时机:细胞扩增状态不理想时,可推迟补液时间,但是尽量不要调整补液的体积尤其注意第一次补液的时机。
6.包被时间:40146-A包被后需4℃平放过夜。
7.培养初期不要随意晃动培养瓶:否则活化的克隆团容易飘起来,而降低包被因子对细胞团的活化。
8.本产品仅作科研用途。
9.为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
Ver.CN20241016